| 摘要 | 第3-6页 |
| abstract | 第6-8页 |
| 中英文缩略词表 | 第12-14页 |
| 前言 | 第14-17页 |
| 第1章 鼠伤寒沙门菌spvB基因对于肠黏膜上皮细胞自噬的影响 | 第17-33页 |
| 1 材料和方法 | 第17-25页 |
| 1.1 材料 | 第17-22页 |
| 1.1.1 菌株和细胞 | 第17页 |
| 1.1.2 主要试剂 | 第17-18页 |
| 1.1.3 主要仪器 | 第18-19页 |
| 1.1.4 培养基和主要液体配制 | 第19-22页 |
| 1.2 方法 | 第22-25页 |
| 1.2.1 细菌的培养和定量 | 第22页 |
| 1.2.2 细胞的培养 | 第22-23页 |
| 1.2.3 细胞的分组 | 第23页 |
| 1.2.4 建立细胞感染模型 | 第23-24页 |
| 1.2.5 透射电镜制片观察 | 第24页 |
| 1.2.6 MDC染色荧光显微镜下观察自噬 | 第24页 |
| 1.2.7 细胞内活菌稀释涂板计数 | 第24页 |
| 1.2.8 免疫印迹法 | 第24-25页 |
| 1.3 统计学处理 | 第25页 |
| 2 结果 | 第25-30页 |
| 2.1 透射电镜观察不同组细胞自噬结构 | 第25-26页 |
| 2.2 MDC染色后观察不同组的自噬强度 | 第26-27页 |
| 2.3 细胞内活菌数量的检测 | 第27-28页 |
| 2.4 WB检测自噬相关蛋白LC3和p62的表达 | 第28-30页 |
| 3 讨论 | 第30-33页 |
| 第2章 鼠伤寒沙门菌spvB基因在影响Henle-407细胞自噬中p38MAPK信号通路的作用 | 第33-42页 |
| 1 材料与方法 | 第33-36页 |
| 1.1 材料 | 第33-34页 |
| 1.1.1 菌株和细胞 | 第33页 |
| 1.1.2 主要试剂 | 第33页 |
| 1.1.3 主要仪器 | 第33-34页 |
| 1.1.4 培养基和主要液体配制 | 第34页 |
| 1.2 方法 | 第34-35页 |
| 1.2.1 细菌培养和定量 | 第34页 |
| 1.2.2 细胞分组及培养 | 第34-35页 |
| 1.2.3 建立细胞感染模型 | 第35页 |
| 1.2.4 免疫印迹法(WB) | 第35页 |
| 1.2.5 细胞免疫荧光法(IF) | 第35页 |
| 1.3 统计学处理 | 第35-36页 |
| 2 结果 | 第36-39页 |
| 2.1 检测各组细胞p38MAPK信号通路的表达水平 | 第36-37页 |
| 2.3 Westernblot检测各组细胞相关蛋白LC3和p62的表达水平 | 第37-38页 |
| 2.4 免疫荧光法检测各组细胞相关蛋白LC3的表达水平 | 第38-39页 |
| 3 讨论 | 第39-42页 |
| 第3章 小结 | 第42-43页 |
| 致谢 | 第43-44页 |
| 参考文献 | 第44-49页 |
| 攻读学位期间的研究成果 | 第49-50页 |
| 本课题所获的基金资助 | 第50-51页 |
| 综述 | 第51-58页 |
| 参考文献 | 第56-58页 |
