| 摘要 | 第5-7页 |
| Abstract | 第7-9页 |
| 前言 | 第14-29页 |
| 1 海参概述 | 第14-17页 |
| 1.1 海洋生物概况 | 第14页 |
| 1.2 海参的分类及形态特征 | 第14-15页 |
| 1.3 海参活性物质组成 | 第15-17页 |
| 2 海参多糖 | 第17-23页 |
| 2.1 功能多糖概述 | 第17-19页 |
| 2.1.1 免疫调节活性 | 第17页 |
| 2.1.2 抗肿瘤活性 | 第17-18页 |
| 2.1.3 降血糖、降血脂 | 第18页 |
| 2.1.4 抗病毒活性 | 第18页 |
| 2.1.5 其它作用活性 | 第18-19页 |
| 2.2 海参多糖的结构 | 第19-20页 |
| 2.3 海参糖胺聚糖的分离纯化 | 第20-21页 |
| 2.4 海参糖胺聚糖分析 | 第21-23页 |
| 2.4.1 海参糖胺聚糖含量测定 | 第21页 |
| 2.4.2 海参糖胺聚糖分子量测定 | 第21-22页 |
| 2.4.3 海参糖胺聚糖有机溶剂残留分析 | 第22-23页 |
| 2.5 海参糖胺聚糖活性 | 第23页 |
| 3 多糖免疫调节活性 | 第23-27页 |
| 3.1 多糖对非特异性免疫的影响 | 第23-24页 |
| 3.1.1 对巨噬细的激活作用 | 第23-24页 |
| 3.1.2 对自然杀伤细胞的激活作用 | 第24页 |
| 3.2 多糖对特异性免疫的影响 | 第24-26页 |
| 3.2.1 多糖对细胞免疫的影响 | 第24-25页 |
| 3.2.2 多糖对体液免疫的影响 | 第25-26页 |
| 3.3 多糖对细胞因子生成的影响 | 第26页 |
| 3.4 多糖的免疫调节机制 | 第26-27页 |
| 4 立题背景和意义 | 第27-29页 |
| 第1章 仿刺参糖胺聚糖的分离纯化及有机溶剂残留分析 | 第29-41页 |
| 1.1 实验材料 | 第29-30页 |
| 1.1.1 实验试剂 | 第29页 |
| 1.1.2 实验仪器 | 第29-30页 |
| 1.1.3 原料 | 第30页 |
| 1.2 方法与结果 | 第30-39页 |
| 1.2.1 仿刺参糖胺聚糖的分离纯化 | 第30-31页 |
| 1.2.2 凝胶渗透色谱法（GPC）测定分子量 | 第31-32页 |
| 1.2.3 气相色谱法测定醋酸根残留 | 第32-36页 |
| 1.2.4 气相色谱法测定乙醇残留 | 第36-39页 |
| 1.3 讨论 | 第39-40页 |
| 1.4 小结 | 第40-41页 |
| 第2章 仿刺参糖胺聚糖对非特异性免疫功能的影响 | 第41-51页 |
| 2.1 实验材料 | 第41-42页 |
| 2.1.1 实验试剂 | 第41页 |
| 2.1.2 实验仪器 | 第41-42页 |
| 2.1.3 药物 | 第42页 |
| 2.1.4 实验动物 | 第42页 |
| 2.1.5 部分溶液和试剂的配制 | 第42页 |
| 2.2 实验方法 | 第42-44页 |
| 2.2.1 腹腔巨噬细胞的收集 | 第42-43页 |
| 2.2.2 设计及分组 | 第43页 |
| 2.2.3 显微镜观察巨噬细胞形态变化 | 第43页 |
| 2.2.4 MTT 法测定巨噬细胞代谢活力 | 第43页 |
| 2.2.5 中性红法测定巨噬细胞吞噬功能 | 第43页 |
| 2.2.6 巨噬细胞中 LDH和 ACP 活力测定 | 第43页 |
| 2.2.7 Griess 法测定 NO 生成量 | 第43-44页 |
| 2.2.8 ELISA法测定培养上清中 TNF-α、IL- 1β含量 | 第44页 |
| 2.2.9 统计学处理 | 第44页 |
| 2.3 实验结果 | 第44-48页 |
| 2.3.1 HGAG 对巨噬细胞形态的影响 | 第44-45页 |
| 2.3.2 HGAG 对巨噬细胞代谢活力的影响 | 第45-46页 |
| 2.3.3 HGAG 对巨噬细胞吞噬功能的影响 | 第46页 |
| 2.3.4 HGAG 对巨噬细胞中 LDH和 ACP 活力影响 | 第46页 |
| 2.3.5 HGAG 对巨噬细胞生成 NO的影响 | 第46-47页 |
| 2.3.6 HGAG 对巨噬细胞分泌 TNF-α和 IL-1β的影响 | 第47-48页 |
| 2.4 讨论 | 第48-49页 |
| 2.5 小结 | 第49-51页 |
| 第3章 海参糖胺聚糖对特异性免疫功能的影响 | 第51-59页 |
| 3.1 实验材料 | 第51-52页 |
| 3.1.1 实验试剂 | 第51页 |
| 3.1.2 实验仪器 | 第51页 |
| 3.1.3 药物 | 第51-52页 |
| 3.1.4 实验动物 | 第52页 |
| 3.1.5 部分溶液和试剂的配制 | 第52页 |
| 3.2 实验方法 | 第52-54页 |
| 3.2.1 单个小鼠脾细胞悬液的制备 | 第52-53页 |
| 3.2.2 MTT 法测定脾淋巴细胞增殖 | 第53页 |
| 3.2.3 迟发型变态反应测定 | 第53页 |
| 3.2.4 血清溶血素生成水平测定 | 第53-54页 |
| 3.2.5 抗体生成细胞数测定 | 第54页 |
| 3.2.6 统计学处理 | 第54页 |
| 3.3 实验结果 | 第54-57页 |
| 3.3.1 HGAG 对小鼠脾淋巴细胞增殖的影响 | 第54-55页 |
| 3.3.2 HGAG 对迟发型变态反应的影响 | 第55-56页 |
| 3.3.3 HGAG 对血清溶血素生成水平的影响 | 第56页 |
| 3.3.4 HGAG 对抗体生成细胞数的影响 | 第56-57页 |
| 3.4 讨论 | 第57-58页 |
| 3.5 小结 | 第58-59页 |
| 总结 | 第59-61页 |
| 参考文献 | 第61-69页 |
| 致谢 | 第69-70页 |
| 个人简历 | 第70-71页 |
