| 摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 英文缩略语词表 | 第11-13页 |
| 前言 | 第13-16页 |
| 1 材料 | 第16-19页 |
| 1.1 实验动物及饲养条件 | 第16页 |
| 1.2 实验仪器与耗材 | 第16-17页 |
| 1.3 实验试剂 | 第17-19页 |
| 2 方法 | 第19-35页 |
| 2.1 SD大鼠TCDD宫内暴露模型建立 | 第19-21页 |
| 2.1.1 阴道细胞涂片 | 第20页 |
| 2.1.2 组织样本采集 | 第20-21页 |
| 2.2 酶联免疫吸附法(ELISA) | 第21-22页 |
| 2.3 卵巢卵泡计数 | 第22-23页 |
| 2.3.1 石蜡切片 | 第22-23页 |
| 2.3.2 HE染色 | 第23页 |
| 2.3.3 卵泡计数 | 第23页 |
| 2.4 TUNEL细胞凋亡检测 | 第23-24页 |
| 2.5 荧光定量PCR | 第24-26页 |
| 2.5.1 总RNA提取 | 第24-25页 |
| 2.5.2 总RNA浓度测定 | 第25页 |
| 2.5.3 反转录 | 第25页 |
| 2.5.4 引物设计与合成 | 第25-26页 |
| 2.5.5 Real-timePCR反应 | 第26页 |
| 2.5.6 Real-timePCR结果分析 | 第26页 |
| 2.6 WesternBlot检测 | 第26-29页 |
| 2.6.1 组织总蛋白提取 | 第26-27页 |
| 2.6.2 蛋白浓度测定 | 第27页 |
| 2.6.3 SDS-PAGE电泳 | 第27-28页 |
| 2.6.4 转膜 | 第28页 |
| 2.6.5 免疫反应 | 第28-29页 |
| 2.6.6 化学发光 | 第29页 |
| 2.6.7 凝胶图像分析 | 第29页 |
| 2.7 亚硫酸氢盐测序法 | 第29-34页 |
| 2.7.1 DNA亚硫酸氢钠修饰 | 第29-30页 |
| 2.7.2 PCR扩增 | 第30-32页 |
| 2.7.3 PCR电泳与DNA回收 | 第32-33页 |
| 2.7.4 PCR纯化产物连接到pUC18-T载体进行转化 | 第33-34页 |
| 2.7.5 蓝白斑筛选和测序 | 第34页 |
| 2.8 统计学分析 | 第34-35页 |
| 3 结果 | 第35-46页 |
| 3.1 宫内TCDD暴露对卵巢功能的影响 | 第35-40页 |
| 3.1.1 对SD大鼠子代阴道开口时间、雌雄比例、卵巢脏器系数和动情周期的影响 | 第35页 |
| 3.1.2 对SD大鼠卵巢卵泡发育的影响 | 第35-37页 |
| 3.1.3 对SD大鼠卵泡细胞凋亡的影响 | 第37-39页 |
| 3.1.4 对SD大鼠血清E2和FSH激素水平的影响 | 第39-40页 |
| 3.2 宫内TCDD暴露对SD大鼠卵巢组织中Igf2/H19mRNA表达的影响.. | 第40-42页 |
| 3.3 宫内TCDD暴露对SD大鼠卵巢组织中IGF2蛋白表达的影响 | 第42-43页 |
| 3.4 宫内TCDD暴露对SD大鼠卵巢组织中Igf2-DMR2/H19-ICR区域甲基化状态的影响 | 第43-46页 |
| 4 讨论 | 第46-51页 |
| 4.1 TCDD宫内暴露动物模型的建立 | 第46-47页 |
| 4.2 TCDD宫内暴露对SD大鼠子代生长发育和卵巢功能的影响 | 第47-48页 |
| 4.3 TCDD宫内暴露对SD大鼠中卵巢组织总Igf2/H19基因表达的影响 | 第48-49页 |
| 4.4 TCDD宫内暴露对SD大鼠卵巢组织中Igf2/H19甲基化水平的影响 | 第49-51页 |
| 5 结论 | 第51-52页 |
| 参考文献 | 第52-57页 |
| 综述 环境污染物对表观遗传学的影响 | 第57-69页 |
| 参考文献 | 第64-69页 |
| 个人简历 | 第69-70页 |
| 教育背景 | 第69页 |
| 硕士期间在校表现 | 第69页 |
| 硕士期间科研成果 | 第69-70页 |
| 致谢 | 第70页 |
