| 摘要 | 第5-6页 |
| ABSTRACT | 第6页 |
| 缩略词注释表 | 第11-12页 |
| 第一章 绪论 | 第12-24页 |
| 1.1 引言 | 第12页 |
| 1.2 纳米材料在生物医学中的应用 | 第12-17页 |
| 1.2.1 纳米材料应用于生物成像检测 | 第12-15页 |
| 1.2.2 二氧化钛纳米材料在生物医学中的应用 | 第15-17页 |
| 1.3 基于原位生物合成的金属纳米簇成像技术 | 第17-20页 |
| 1.4 光动力治疗的研究进展 | 第20-22页 |
| 1.5 本文的研究基础与主要目的 | 第22-24页 |
| 第二章 原位生物合成的金-铁纳米簇复合材料在肿瘤多模态生物成像中的应用 | 第24-52页 |
| 2.1 前言 | 第24-25页 |
| 2.2 实验材料与方法 | 第25-28页 |
| 2.2.1 实验用动物的选择与饲养 | 第25页 |
| 2.2.2 肿瘤动物模型的构建与分组 | 第25-26页 |
| 2.2.3 细胞培养 | 第26页 |
| 2.2.4 MTT法检测细胞存活率 | 第26页 |
| 2.2.5 血清标志物检测 | 第26页 |
| 2.2.6 器官病理切片 | 第26-27页 |
| 2.2.7 细胞生物成像 | 第27页 |
| 2.2.8 活体生物成像 | 第27页 |
| 2.2.9 MR和CT成像 | 第27页 |
| 2.2.10 原位生物合成纳米复合材料的提取 | 第27-28页 |
| 2.2.11 数据分析 | 第28页 |
| 2.3 实验结果 | 第28-45页 |
| 2.3.1 生物相容性分析 | 第28-31页 |
| 2.3.2 细胞激光共聚焦荧光成像 | 第31页 |
| 2.3.3 小动物活体生物荧光成像 | 第31-36页 |
| 2.3.4 动物器官荧光成像 | 第36-38页 |
| 2.3.5 MR和CT成像 | 第38-39页 |
| 2.3.6 金-铁纳米复合材料的表征 | 第39-43页 |
| 2.3.7 体外金离子、铁离子与GSH之间相互反应的模拟实验 | 第43-45页 |
| 2.4 讨论 | 第45-50页 |
| 2.5 小结 | 第50-52页 |
| 第三章 基于原位生物合成的锌纳米簇探针的卒中活体生物成像 | 第52-64页 |
| 3.1 前言 | 第52-53页 |
| 3.2 实验材料与方法 | 第53-55页 |
| 3.2.1 激光共聚焦荧光成像 | 第53页 |
| 3.2.2 动物建模和饲养 | 第53-54页 |
| 3.2.3 动物模型分组 | 第54页 |
| 3.2.4 活体小动物成像 | 第54页 |
| 3.2.5 组织病理生理学分析 | 第54页 |
| 3.2.6 ELISA分析 | 第54页 |
| 3.2.7 锌纳米簇的提取 | 第54页 |
| 3.2.8 锌纳米簇的表征 | 第54-55页 |
| 3.2.9 细胞培养 | 第55页 |
| 3.3 实验结果与讨论 | 第55-60页 |
| 3.3.1 荧光成像 | 第55-58页 |
| 3.3.2 病理切片分析 | 第58-60页 |
| 3.3.3 生物合成的锌纳米簇表征 | 第60页 |
| 3.4 小结 | 第60-64页 |
| 第四章 TSPP/TiO_2纳米复合材料应用于类风湿性关节炎的诊疗 | 第64-98页 |
| 4.1 TSPP/TiO_2纳米复合材料的生物相容性评价 | 第64-76页 |
| 4.1.1 引言 | 第64-65页 |
| 4.1.2 实验材料与方法 | 第65-67页 |
| 4.1.2.1 MTT法检测细胞毒性 | 第65-66页 |
| 4.1.2.2 动物分组与饲养 | 第66页 |
| 4.1.2.3 TSPP溶液的配置与注射 | 第66-67页 |
| 4.1.2.4 病理生理学样本分析 | 第67页 |
| 4.1.2.5 血液样本的生化分析 | 第67页 |
| 4.1.2.6 生物荧光成像 | 第67页 |
| 4.1.2.7 数据分析 | 第67页 |
| 4.1.3 实验结果 | 第67-74页 |
| 4.1.3.1 MTT法检测细胞毒性 | 第67页 |
| 4.1.3.2 肉眼观察组织病变 | 第67-69页 |
| 4.1.3.3 全血细胞计数 | 第69-70页 |
| 4.1.3.4 病理生理学实验 | 第70-72页 |
| 4.1.3.5 血液生化分析 | 第72-73页 |
| 4.1.3.6 器官荧光成像 | 第73-74页 |
| 4.1.4 讨论 | 第74-76页 |
| 4.1.5 小结 | 第76页 |
| 4.2 TSPP-TiO_2纳米复合材料应用于类风湿性关节炎的诊疗 | 第76-88页 |
| 4.2.1 前言 | 第76-78页 |
| 4.2.2 实验材料和方法 | 第78-81页 |
| 4.2.2.1 实验动物的选择与饲养 | 第78页 |
| 4.2.2.2 关节炎模型的构建 | 第78-79页 |
| 4.2.2.3 动物模型分组 | 第79-80页 |
| 4.2.2.4 光敏剂材料的制备与给药 | 第80页 |
| 4.2.2.5 血液样本检测与分析 | 第80页 |
| 4.2.2.6 ELISA实验 | 第80页 |
| 4.2.2.7 组织病理学分析 | 第80页 |
| 4.2.2.8 细胞培养与激光共聚焦荧光成像 | 第80页 |
| 4.2.2.9 小动物活体荧光成像 | 第80-81页 |
| 4.2.2.10 关节炎症状评分 | 第81页 |
| 4.2.2.11 数据分析 | 第81页 |
| 4.2.3 结果 | 第81-86页 |
| 4.2.3.1 血清分析 | 第81页 |
| 4.2.3.2 全血细胞计数分析 | 第81-82页 |
| 4.2.3.3 病理组织切片分析 | 第82-83页 |
| 4.2.3.4 关节炎评分 | 第83页 |
| 4.2.3.5 小动物活体荧光生物成像 | 第83-86页 |
| 4.2.4 讨论 | 第86-88页 |
| 4.2.5 小结 | 第88页 |
| 4.3 活体动物模型PDT后BMSC相关miRNAs表达水平分析 | 第88-98页 |
| 4.3.1 前言 | 第88-89页 |
| 4.3.2 实验材料与方法 | 第89-90页 |
| 4.3.2.1 动物选择与饲养,建立CIA模型 | 第89页 |
| 4.3.2.2 纳米复合材料的制备 | 第89页 |
| 4.3.2.3 BMSC的体外培养 | 第89-90页 |
| 4.3.2.4 miRNA表达水平分析 | 第90页 |
| 4.3.3 结果 | 第90-91页 |
| 4.3.4 讨论 | 第91-96页 |
| 4.3.5 小结 | 第96-98页 |
| 第五章 总结与展望 | 第98-100页 |
| 5.1 主要研究成果 | 第98-99页 |
| 5.2 主要创新点 | 第99页 |
| 5.3 展望 | 第99-100页 |
| 参考文献 | 第100-118页 |
| 博士阶段主要成果 | 第118-121页 |
| 期刊论文 | 第118-119页 |
| 专利 | 第119-120页 |
| 参加会议 | 第120页 |
| 获奖情况 | 第120-121页 |
| 致谢 | 第121页 |
