| 摘要 | 第6-8页 |
| Abstract | 第8-9页 |
| 常用缩写词中英文对照表 | 第10-11页 |
| 前言 | 第11-13页 |
| 1 材料与方法 | 第13-24页 |
| 1.1 材料 | 第13-16页 |
| 1.1.1 实验动物 | 第13页 |
| 1.1.2 主要仪器 | 第13-14页 |
| 1.1.3 主要药品及试剂 | 第14页 |
| 1.1.4 主要溶液配制方法 | 第14-16页 |
| 1.1.5 组织获取器械 | 第16页 |
| 1.2 实验方法和具体实验步骤 | 第16-24页 |
| 1.2.1 成人膝关节软骨组织的取材、固定、切片 | 第16页 |
| 1.2.2 Agg~(tm(IRES-CreERT2)/+);HDAC4~(fl/fl)条件性敲基因小鼠的繁育 | 第16页 |
| 1.2.3 实验动物分组 | 第16-17页 |
| 1.2.4 实验动物的处理 | 第17页 |
| 1.2.5 PCR确定小鼠基因型 | 第17-18页 |
| 1.2.5.1 消化至基因组DNA | 第17页 |
| 1.2.5.2 Agg~(tm(IRES-CreERT2))基因与HDAC4~(fl/fl)基因扩增 | 第17-18页 |
| 1.2.5.3 2 %琼脂糖凝胶电泳 | 第18页 |
| 1.2.6 小鼠膝关节取材、固定、切片 | 第18-19页 |
| 1.2.7 番红O固绿染色 | 第19页 |
| 1.2.8 OARSI评分 | 第19-20页 |
| 1.2.9 HDAC4、Runx-2、Sox-9、CollagenX、MMP-13、Aggrecan、CollagenⅡ免疫组化 | 第20-21页 |
| 1.2.10 Rt-PCR检测 | 第21-23页 |
| 1.2.10.1 软骨组织中总RNA的提取 | 第21-22页 |
| 1.2.10.2 Rt-PCR检测HDAC4、Agg、ColⅡ、Runx2、Sox-9、ColX、Ihh、MMP-13、PTHrP和Gli1基因mRNA表达水平 | 第22-23页 |
| 1.2.11 数据处理 | 第23-24页 |
| 2 结果 | 第24-36页 |
| 2.1 成人膝关节OA | 第24页 |
| 2.2 成人膝关节软骨 HDAC4 免疫组化 | 第24-26页 |
| 2.3 子代小鼠基因型鉴定与筛选 | 第26页 |
| 2.4 两月龄未打药Agg~(tm(IRES-CreERT2)/+);HDAC4~(fl/fl)基因型小鼠与野生型小鼠对比 | 第26-29页 |
| 2.5 HDAC4基因的敲除 | 第29-30页 |
| 2.6 8 月龄各组小鼠膝关节改变及OARSI评分 | 第30-31页 |
| 2.7 免疫组化检测HDAC4基因敲除小鼠软骨细胞肥大化及骨关节炎相关因子表达量的改变 | 第31-34页 |
| 2.8 Rt-PCR检测HDAC4基因敲除小鼠软骨细胞肥大化及骨关节炎相关因子表达量的改变 | 第34-36页 |
| 3 讨论 | 第36-39页 |
| 4 结论 | 第39-40页 |
| 参考文献 | 第40-42页 |
| 综述 | 第42-52页 |
| 参考文献 | 第48-52页 |
| 致谢 | 第52-53页 |
| 在学期间承担/参与的科研课题与研究成果 | 第53-54页 |
| 个人简历 | 第54页 |
