| 摘要 | 第8-9页 |
| Abstract | 第9页 |
| 英文缩略词 | 第10-12页 |
| 第一章 前言 | 第12-25页 |
| 1.1 核受体简介 | 第12-18页 |
| 1.1.1 核受体的分类与结构 | 第12-13页 |
| 1.1.2 核受体RXRα | 第13-15页 |
| 1.1.3 核受体RXRα的基因型功能 | 第15-16页 |
| 1.1.4 核受体RXRα的非基因型功能 | 第16-17页 |
| 1.1.5 核受体RXRα的蛋白翻译后修饰调控 | 第17-18页 |
| 1.2 肝癌与HBX相关背景简介 | 第18-21页 |
| 1.2.1 肝癌现状 | 第18-19页 |
| 1.2.2 HBv病毒与肝癌 | 第19-21页 |
| 1.3 JNK信号通路简介 | 第21-23页 |
| 1.3.1 JNK信号通路的结构与功能 | 第21-22页 |
| 1.3.2 JNK信号通路与HBx | 第22页 |
| 1.3.3 JNK信号通路与核受体RXR | 第22-23页 |
| 1.4 本论文研究的目的、内容和意义 | 第23-25页 |
| 第二章 材料与方法 | 第25-50页 |
| 2.1 材料 | 第25-29页 |
| 2.1.1 细胞株 | 第25页 |
| 2.1.2 主要试剂 | 第25-26页 |
| 2.1.3 主要仪器和来源 | 第26-27页 |
| 2.1.4 质粒载体 | 第27-29页 |
| 2.2 主要溶液配制 | 第29-34页 |
| 2.2.1 细菌LB培养基 | 第29-30页 |
| 2.2.2 感受态细菌制备与转化相关溶液 | 第30-31页 |
| 2.2.3 琼脂糖电泳相关溶液 | 第31页 |
| 2.2.4 细胞培养相关溶液 | 第31-32页 |
| 2.2.5 Western blot相关溶液 | 第32-34页 |
| 2.2.6 CO-IP Lysis Buffer(200mL) | 第34页 |
| 2.3 实验方法 | 第34-50页 |
| 2.3.1 普通PCR获取目的基因和重组质粒的构建 | 第34-39页 |
| 2.3.2 RXRa突变体T82A、S260A、T82A/S260A及其重组载体的构建 | 第39-42页 |
| 2.3.3 细胞培养 | 第42-43页 |
| 2.3.4 细胞转染 | 第43-44页 |
| 2.3.5 蛋白质的提取与Western Blotting | 第44-46页 |
| 2.3.6 免疫共沉淀技术 | 第46页 |
| 2.3.7 免疫荧光染色 | 第46-48页 |
| 2.3.8 RT-PCR技术 | 第48-49页 |
| 2.3.9 报告基因技术 | 第49-50页 |
| 第三章 结果分析 | 第50-62页 |
| 3.1 相关质粒和HBx稳转细胞系的构建 | 第50-52页 |
| 3.1.1 相关质粒的构建 | 第50-51页 |
| 3.1.2 HBx稳转细胞系的构建 | 第51-52页 |
| 3.2 在体内或体外环境下HBx诱导RXRα磷酸化 | 第52-54页 |
| 3.3 HBx诱导RXRα碳酸化依赖于JNK信号途径 | 第54-56页 |
| 3.4 JNK2与RXRα相互作用 | 第56-58页 |
| 3.5 JNK2磷酸化RXRα的82位苏氨酸 | 第58-59页 |
| 3.6 HBx诱导磷酸化的RXRα转录活性下调 | 第59-62页 |
| 第四章 讨论 | 第62-65页 |
| 第五章 结论 | 第65-66页 |
| 参考文献 | 第66-73页 |
| 致谢 | 第73页 |
