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金属蛋白酶ADAMTS18对黑色素瘤转移的作用研究

摘要第5-7页
Abstract第7-8页
缩略词第12-13页
第一章 前言第13-18页
    1.1 黑色素瘤的现状和治疗第13页
    1.2 肿瘤微环境及金属蛋白酶ADAMTS18对于肿瘤发生发展的作用第13-16页
    1.3 ADAMTS18和黑色素瘤的关系第16页
    1.4 研究目的第16-18页
第二章 实验材料第18-24页
    2.1 实验动物第18页
    2.2 实验细胞第18页
    2.3 实验试剂第18-21页
    2.4 实验仪器第21-23页
    2.5 实验耗材第23-24页
第三章 实验方法第24-44页
    3.1 实验小鼠的饲养和繁殖第24-25页
    3.2 小鼠基因型的PCR鉴定第25-28页
        3.2.1 小鼠基因型鉴定原理第25-26页
        3.2.2 小鼠基因型鉴定方法第26-28页
    3.3 RT-PCR检测小鼠不同组织中RNA的表达第28-31页
        3.3.1 TotalRNA的提取第28-29页
        3.3.2 RNA电泳(检测提取的RNA降解程度)第29页
        3.3.3 翻转RNA第29-30页
        3.3.4 PCR第30-31页
    3.4 小鼠组织蛋白质的抽提第31-32页
    3.5 BCA方法蛋白浓度的测定第32-33页
    3.6 蛋白质印迹法(WesternBlot)检测小鼠不同组织中蛋白质的表达第33-35页
    3.7 黑色素瘤细胞的培养第35-37页
        3.7.1 细胞复苏第35-36页
        3.7.2 细胞传代第36-37页
        3.7.3 细胞计数第37页
    3.8 转移黑色素瘤模型的构建第37-38页
    3.9 Transwell黑色素瘤细胞趋化实验第38-40页
        3.9.1 Transwell小室的基本结构第38页
        3.9.2 Transwell的使用方法和基本功能第38-39页
        3.9.3 黑色素瘤细胞的Transwell趋化实验第39-40页
    3.10 Laminin作用下的B16黑色素瘤粘附实验第40-41页
    3.11 苏木精、伊红染色(HE染色)第41-42页
    3.12 酶联接免疫吸附剂测定(ELISA)第42-44页
第四章 实验结果第44-58页
    4.1 通过杂交获得C57BL/6纯系Adamts18基因缺陷小鼠第44-46页
    4.2 Adamts18缺失对黑色素瘤转移的作用研究第46-48页
        4.2.1 转移黑色素瘤实验流程第46页
        4.2.2 转移黑色素模型的构建和分析第46-48页
    4.3 ADAMTS18对肺ECM的重塑第48-49页
        4.3.1 B16黑色素瘤细胞中无Adamts18mRNA的表达第48页
        4.3.2 利用酶联免疫吸附测定法探究ADAMTS18对肺ECM的影响第48-49页
    4.4 Laminin(LN)介导的黑色素瘤转移信号通路作用研究第49-53页
        4.4.1 t-PI3K和p-PI3K在KO小鼠和WT小鼠肺组织中表达量的测定第50-51页
        4.4.2 t-SK6和p-SK6在KO小鼠和WT小鼠肺组织中表达量的测定第51-52页
        4.4.3 Laminin(LN)介导PI3K-Akt-mTOR-SK6信号通路促进黑色素瘤的肺转移和生长第52-53页
    4.5 Laminin体外作用B16黑色素瘤细胞的研究第53-58页
        4.5.1 Laminin体外剂量依赖性促进B16黑色素瘤细胞黏附实验第53-55页
        4.5.2 Laminin体外剂量依赖性促进B16黑色素瘤细胞趋化实验第55-58页
第五章 讨论与展望第58-61页
第六章 附录第61-64页
    6.1 常用实验试剂的配制第61-63页
    6.2 科研成果及荣誉第63-64页
引用文献第64-69页
致谢第69页

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