| 摘要 | 第10-12页 |
| ABSTRACT | 第12-14页 |
| 第1章 绪论 | 第15-37页 |
| 1.1 X射线的起源 | 第15-16页 |
| 1.2 同步辐射X射线 | 第16-20页 |
| 1.2.1 同步辐射X射线的发展 | 第16-17页 |
| 1.2.2 同步辐射X射线的特征 | 第17-18页 |
| 1.2.3 同步辐射X射线波带片 | 第18-20页 |
| 1.3 断层扫描成像 | 第20-23页 |
| 1.3.1 CT的产生与发展 | 第20-21页 |
| 1.3.2 傅里叶变换与中心切片定理 | 第21-22页 |
| 1.3.3 样品对X射线的吸收 | 第22-23页 |
| 1.4 同步辐射X射线成像方法 | 第23-29页 |
| 1.4.1 全场透射X射线成像(Full-Field Transmission X-ray Microscopy,TXM) | 第24-25页 |
| 1.4.2 扫描透射X射线成像(Scanning Transmission X-ray Microscopy,STXM) | 第25-27页 |
| 1.4.3 同步辐射相衬成像 | 第27-28页 |
| 1.4.4 基于STXM的扫描CDI成像方法 | 第28-29页 |
| 1.5 辐射损伤与低剂量X射线成像 | 第29-34页 |
| 1.5.1 样品的辐射剂量 | 第30页 |
| 1.5.2 生物样品的辐射效应 | 第30-31页 |
| 1.5.3 等斜率层析三维重建算法 | 第31-34页 |
| 1.6 目前低剂量同步辐射X射线成像中存在的问题 | 第34-35页 |
| 1.7 本文的主要研究内容 | 第35-37页 |
| 第2章 EST三维重建的模拟计算 | 第37-45页 |
| 2.1 引言 | 第37页 |
| 2.2 EST模拟的模型信息 | 第37-38页 |
| 2.3 模拟重建的参数 | 第38-39页 |
| 2.4 重建结果与分析 | 第39-44页 |
| 2.5 本章小结 | 第44-45页 |
| 第3章 酵母菌的CT与扫描CDI成像 | 第45-72页 |
| 3.1 引言 | 第45-47页 |
| 3.2 酵母细胞的低剂量三维STXM成像 | 第47-56页 |
| 3.2.1 酵母菌的培养与制备 | 第47-49页 |
| 3.2.2 同步辐射STXM实验的参数 | 第49页 |
| 3.2.3 投影数据的处理 | 第49-51页 |
| 3.2.4 三维重建的预处理 | 第51-53页 |
| 3.2.5 EST重建与分析 | 第53-56页 |
| 3.3 酵母细胞扫描CDI三维成像 | 第56-67页 |
| 3.3.1 ptychography重建原理 | 第56-58页 |
| 3.3.2 ptychography重建结果与分析 | 第58-61页 |
| 3.3.3 模值信息的三维重建 | 第61-63页 |
| 3.3.4 相位信息的三维重建 | 第63-67页 |
| 3.4 EST重建结果的分析 | 第67-70页 |
| 3.4.1 辐射损伤的分析 | 第67-68页 |
| 3.4.2 三维成像的分辨率 | 第68-69页 |
| 3.4.3 相位与模值三维重建的对比 | 第69-70页 |
| 3.5 本章小结 | 第70-72页 |
| 第4章 小鼠血管的三维X射线显微成像 | 第72-84页 |
| 4.1 引言 | 第72-73页 |
| 4.2 实验原理与设计 | 第73-75页 |
| 4.2.1 样品与实验设备信息 | 第73-74页 |
| 4.2.2 X射线透射成像参数 | 第74-75页 |
| 4.3 血管的三维成像 | 第75-79页 |
| 4.3.1 投影的数据处理 | 第75-76页 |
| 4.3.2 干燥样品投影的重建 | 第76-77页 |
| 4.3.3 含水样品投影的重建 | 第77-79页 |
| 4.4 血管三维结构分析 | 第79-83页 |
| 4.4.1 干燥血管的三维结构 | 第79-81页 |
| 4.4.2 含水血管的三维结构 | 第81-83页 |
| 4.5 本章小结 | 第83-84页 |
| 第5章 总结与展望 | 第84-86页 |
| 5.1 主要结论 | 第84-85页 |
| 5.2 创新点 | 第85页 |
| 5.3 有待于进一步开展的工作 | 第85-86页 |
| 参考文献 | 第86-93页 |
| 致谢 | 第93-95页 |
| 攻读学位期间取得的研究成果 | 第95-96页 |
| 学位论文评阅及答辩情况表 | 第96页 |
