| 中文摘要 | 第3-4页 |
| Abstract | 第4-5页 |
| 第一章 绪论 | 第9-16页 |
| 1.1 研究背景 | 第9页 |
| 1.2 引导骨组织再生 | 第9-10页 |
| 1.3 同轴静电纺丝技术 | 第10-11页 |
| 1.4 同轴静电纺丝壳层材料 | 第11-12页 |
| 1.5 同轴静电纺丝芯层生长因子 | 第12-13页 |
| 1.6 骨髓间充质干细胞 | 第13-14页 |
| 1.7 课题研究的内容和意义 | 第14-16页 |
| 1.7.1 研究内容 | 第14-15页 |
| 1.7.2 研究方案 | 第15页 |
| 1.7.3 课题的研究意义 | 第15-16页 |
| 第二章 携载BMP-2和IGF-1同轴静电纺丝的制备与体外实验研究 | 第16-27页 |
| 2.1 实验材料与设备 | 第16-17页 |
| 2.1.1 实验材料与试剂 | 第16-17页 |
| 2.1.2 实验主要仪器和设备 | 第17页 |
| 2.2 同轴静电纺丝纤维屏障膜的制备与表面形貌的观察 | 第17-18页 |
| 2.2.1 同轴静电纺丝纤维屏障膜的制备 | 第17-18页 |
| 2.2.2 同轴静电纺丝纤维屏障膜表面形貌观察 | 第18页 |
| 2.3 同轴静电纺丝纤维屏障膜的体外实验研究 | 第18-21页 |
| 2.3.1 同轴静电纺丝纤维屏障膜的体外降解 | 第18页 |
| 2.3.2 SD大鼠骨髓间充质干细胞的分离培养与鉴定 | 第18-19页 |
| 2.3.3 骨髓间充质干细胞接种于纳米纤维膜上 | 第19页 |
| 2.3.4 细胞的增值 | 第19-20页 |
| 2.3.5 碱性磷酸酶(ALP)活性检测 | 第20页 |
| 2.3.6 茜素红染色 | 第20页 |
| 2.3.7 实时荧光定量PCR(QuantitativeReal-time,PCR) | 第20-21页 |
| 2.3.8 数据分析 | 第21页 |
| 2.4 同轴静电纺丝形貌观与体外实验结果 | 第21-27页 |
| 2.4.1 纳米纤维膜形貌观 | 第21-22页 |
| 2.4.2 纳米纤维膜的体外降解 | 第22页 |
| 2.4.3 SD大鼠骨髓间充质干细胞的培养及细胞鉴定 | 第22-23页 |
| 2.4.4 纳米纤维膜的生物相容性 | 第23-24页 |
| 2.4.5 BMSCs在膜上的细胞活力检测结果 | 第24页 |
| 2.4.6 ALP检测结果 | 第24-25页 |
| 2.4.7 茜素红染色结果 | 第25-26页 |
| 2.4.8 实时荧光定量PCR检测结果 | 第26-27页 |
| 第三章 携载BMP-2和IGF-1同轴静电纺丝体内实验研究 | 第27-33页 |
| 3.1 体内实验材料与设备 | 第27页 |
| 3.1.1 体内实验材料与试剂 | 第27页 |
| 3.1.2 体内实验主要仪器和设备 | 第27页 |
| 3.2 体内实验方法 | 第27-30页 |
| 3.2.1 体内实验动物的选择与分组 | 第27-28页 |
| 3.2.2 实验所需材料及10%水合氯醛的配置 | 第28页 |
| 3.2.3 纳米纤维膜的灭菌 | 第28页 |
| 3.2.4 颅骨缺损的制备 | 第28-29页 |
| 3.2.5 术后维护 | 第29页 |
| 3.2.6 离体组织固定 | 第29页 |
| 3.2.7 离体组织micro-CT检测 | 第29页 |
| 3.2.8 离体组织脱钙 | 第29-30页 |
| 3.2.9 组织脱水、透明和包埋 | 第30页 |
| 3.2.10 组织学观察 | 第30页 |
| 3.2.11 数据分析 | 第30页 |
| 3.3 体内实验结果 | 第30-33页 |
| 3.3.1 术后大体观 | 第31页 |
| 3.3.2 micro-CT检测 | 第31-32页 |
| 3.3.3 组织学观察 | 第32-33页 |
| 第四章 讨论 | 第33-35页 |
| 第五章 结论与展望 | 第35-37页 |
| 5.1 主要结论 | 第35页 |
| 5.2 研究展望 | 第35-37页 |
| 参考文献 | 第37-44页 |
| 在学期间的研究成果 | 第44-45页 |
| 致谢 | 第45-46页 |
| 临床病例汇报 | 第46-55页 |
