| 中文摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 缩略语/符号说明 | 第11-12页 |
| 前言 | 第12-14页 |
| 研究现状、成果 | 第12-13页 |
| 研究目的、方法 | 第13-14页 |
| 一、许旺细胞力学加载模型的构建 | 第14-21页 |
| 1.1 对象和方法 | 第14-16页 |
| 1.1.1 主要实验装置与试剂 | 第14-15页 |
| 1.1.2 硅橡胶力学载体的制备 | 第15页 |
| 1.1.3 细胞应变装置中硅橡胶膜的应变分析 | 第15页 |
| 1.1.4 硅橡胶膜的生物相容性测试 | 第15-16页 |
| 1.1.5 统计学方法 | 第16页 |
| 1.2 结果 | 第16-17页 |
| 1.2.1 硅橡胶力学载体的外观 | 第16页 |
| 1.2.2 硅橡胶力学载体的力学分析 | 第16-17页 |
| 1.2.3 生物相容性测试 | 第17页 |
| 1.3 讨论 | 第17-19页 |
| 1.4 小结 | 第19-21页 |
| 二、许旺细胞的纯化 | 第21-29页 |
| 2.1 对象和方法 | 第21-23页 |
| 2.1.1 实验动物、主要试剂及仪器 | 第21页 |
| 2.1.2 原代许旺细胞的分离培养 | 第21页 |
| 2.1.3 许旺细胞的纯化 | 第21-22页 |
| 2.1.4 许旺细胞S-100免疫细胞化学染色鉴定 | 第22页 |
| 2.1.5 许旺细胞纯度的计算 | 第22-23页 |
| 2.1.6 流式细胞周期技术测定许旺细胞活性 | 第23页 |
| 2.1.7 统计学分析 | 第23页 |
| 2.2 结果 | 第23-25页 |
| 2.2.1 原代细胞培养及形态学观察 | 第23页 |
| 2.2.2 许旺细胞的S-100免疫细胞化学染色方法鉴定 | 第23-24页 |
| 2.2.3 三种许旺细胞纯化方法比较 | 第24页 |
| 2.2.4 形态学方法测定许旺细胞纯度 | 第24页 |
| 2.2.5 流式细胞学方法测定许旺细胞活性 | 第24-25页 |
| 2.3 讨论 | 第25-26页 |
| 2.4 小结 | 第26-29页 |
| 三、力学刺激对许旺细胞增殖的影响 | 第29-42页 |
| 3.1 材料与方法 | 第29-31页 |
| 3.1.1 主要实验试剂与器材 | 第29页 |
| 3.1.2 许旺细胞的取材于处理 | 第29页 |
| 3.1.3 采用BioDynamic生物反应舱系统为大鼠许旺细胞加载CTS | 第29页 |
| 3.1.4 流式细胞技术检测增殖相关指标 | 第29-30页 |
| 3.1.5 基因差异表达谱分析 | 第30-31页 |
| 3.1.6 统计学处理 | 第31页 |
| 3.2 结果 | 第31-34页 |
| 3.2.1 许旺细胞的纯化 | 第31页 |
| 3.2.2 免疫细胞化学染色鉴定 | 第31页 |
| 3.2.3 周期性循环牵张应力对许旺细胞形态的影响 | 第31页 |
| 3.2.4 周期性循环牵张应力对许旺细胞增殖的影响 | 第31-32页 |
| 3.2.5 许旺细胞表达谱分析 | 第32-34页 |
| 3.3 讨论 | 第34-38页 |
| 3.3.1 缓慢牵张与周围神经损伤 | 第34-35页 |
| 3.3.2 循环牵张应力对许旺细胞形态的影响 | 第35-36页 |
| 3.3.3 循环牵张应力对许旺细胞增殖的影响 | 第36页 |
| 3.3.4 循环牵张应力对许旺细胞产物表达的影响 | 第36-38页 |
| 3.4 小结 | 第38-42页 |
| 结论 | 第42-43页 |
| 参考文献 | 第43-47页 |
| 发表论文和参加科研情况说明 | 第47-48页 |
| 综述 | 第48-57页 |
| 综述参考文献 | 第54-57页 |
| 致谢 | 第57页 |
