摘要 | 第6-7页 |
Abstract | 第7-8页 |
第一章 文献综述 | 第16-29页 |
1.1 淀粉在光合器官中的合成 | 第16-19页 |
1.2 淀粉在贮藏器官中的合成 | 第19-20页 |
1.2.1 双子叶植物的贮藏器官细胞中的淀粉合成 | 第20页 |
1.2.2 单子叶植物的贮藏器官细胞中的淀粉合成 | 第20页 |
1.3 增加贮藏器官中淀粉含量的有效途径 | 第20-24页 |
1.3.1 增加蔗糖的供给 | 第21页 |
1.3.2 增强蔗糖的降解 | 第21页 |
1.3.3 提高ADP-葡萄糖焦磷酸化酶的活性 | 第21页 |
1.3.4 减少ADP-葡萄糖的降解 | 第21-22页 |
1.3.5 提高合成底物向造粉体的转运 | 第22页 |
1.3.6 提高淀粉合酶的表达 | 第22-23页 |
1.3.7 减少淀粉的降解 | 第23页 |
1.3.8 改变调控因子的表达 | 第23-24页 |
1.3.9 增加海藻糖6磷酸含量 | 第24页 |
1.4 ADP-葡萄糖焦磷酸化酶研究进展 | 第24-28页 |
1.5 本研究的目的及意义 | 第28-29页 |
第二章 实验材料及方法 | 第29-37页 |
2.1 实验材料 | 第29页 |
2.2 实验方法 | 第29-36页 |
2.2.1 引物设计 | 第29页 |
2.2.2 小麦材料DNA提取 | 第29-30页 |
2.2.3 小麦材料总RNA的提取 | 第30-31页 |
2.2.4 反转录与相对实时定量测定 | 第31-32页 |
2.2.5 TaSus酶活测定 | 第32-33页 |
2.2.6 GUS荧光定量测定 | 第33-34页 |
2.2.7 PCR扩增、产物回收与纯化 | 第34页 |
2.2.8 PCR产物的连接与转化 | 第34-35页 |
2.2.9 质粒小量提取 | 第35页 |
2.2.10 测序 | 第35-36页 |
2.2.11 剪切扩增多态性位点(CAPS)标记 | 第36页 |
2.3 数据统计分析 | 第36-37页 |
第三章 蔗糖合酶基因遗传变异及进化和育种选择研究 | 第37-48页 |
3.1 小麦蔗糖合酶基因TaSus的同源克隆及染色体定位 | 第37页 |
3.2 TaSus单元型分析 | 第37-43页 |
3.2.1 TaSus单元型分子标记开发 | 第38-40页 |
3.2.2 TaSus四个基因的单元型与千粒重的相关性分析 | 第40-43页 |
3.3 TaSus单元型的相对表达量与酶活测定 | 第43-44页 |
3.4 影响TaSus1-7A酶活的变异位点 | 第44-45页 |
3.5 TaSus1-7A在小麦多倍体化中的选择 | 第45-46页 |
3.6 TaSus四个基因优异单元型在全球育种中的选择 | 第46-48页 |
第四章 ADP-葡萄糖焦磷酸化酶(AGPase)基因的变异及进化和育种选择 | 第48-63页 |
4.1 小麦AGPase基因的同源克隆及染色体定位 | 第48页 |
4.2 TaAGP的单元型分析 | 第48-54页 |
4.2.1 TaAGP-S1-7A单元型关键位点分析 | 第50-51页 |
4.2.2 TaAGP-L-1B单元型关键位点分析 | 第51-54页 |
4.3 TaAGP不同单元型在中国小麦微核心材料(MCC)中的千粒重比较 | 第54页 |
4.4 TaAGP不同单元型在中国小麦育成品种(MC)中的千粒重比较 | 第54-56页 |
4.5 TaAGP不同单元型组合在MCC和MC中的分析 | 第56-57页 |
4.6 TaAGP在小麦多倍体化过程中的选择 | 第57-61页 |
4.6.1 TaAGP-S1-7A在小麦多倍体化过程中的选择 | 第57-60页 |
4.6.2 TaAGP-L-1B在小麦多倍体化过程中的选择 | 第60-61页 |
4.7 TaAGP与TaSus单元型组合在群体中的分析 | 第61-63页 |
第五章 讨论 | 第63-66页 |
5.1 基于重要代谢通路关键基因的单元型分析,是解析性状形成的有效方法 | 第63页 |
5.2 影响产量的重要基因在驯化和育种过程中受到强烈的选择 | 第63-64页 |
5.3 TaSus和TaAGP优异单元型之间的互作以简单加性效应为主 | 第64页 |
5.4 淀粉合成通路关键酶基因的研究思路探讨 | 第64-66页 |
第六章 结论 | 第66-67页 |
参考文献 | 第67-85页 |
附录 | 第85-87页 |
致谢 | 第87-88页 |
作者简历 | 第88页 |