| 摘要 | 第6-8页 |
| ABSTRACT | 第8-9页 |
| 1 引言 | 第10-18页 |
| 1.1 课题来源，研究的目的和意义 | 第10-11页 |
| 1.2 国内外研究概况 | 第11-18页 |
| 1.3 论文的主要研究内容 | 第18页 |
| 2 材料与方法 | 第18-42页 |
| 2.1 实验动物仪器设备 | 第18-24页 |
| 2.1.1 实验动物 | 第18页 |
| 2.1.2 主要仪器 | 第18-19页 |
| 2.1.3 主要试剂 | 第19-22页 |
| 2.1.4 试剂配制 | 第22-24页 |
| 2.2 实验流程与方法 | 第24-42页 |
| 2.2.1 中枢神经系统炎症模型的构建 | 第24-25页 |
| 2.2.2 用于蛋白定量分析的组织取材 | 第25-26页 |
| 2.2.3 用于脑切片的组织取材 | 第26页 |
| 2.2.4 大鼠小胶质细胞的原代培养及纯化 | 第26-27页 |
| 2.2.5 原代神经元培养及凋亡模型的构建 | 第27页 |
| 2.2.6 ESE1 过表达质粒的构建以及鉴定 | 第27-34页 |
| 2.2.7 ESE1 siRNA 的合成 | 第34页 |
| 2.2.8 LDH | 第34-35页 |
| 2.2.9 Western Blot | 第35-38页 |
| 2.2.10 细胞免疫共沉淀(Co-Immunoprecipitation，Co-IP) | 第38-39页 |
| 2.2.11 免疫组化（Immunohistochemistry）检测阳性细胞 | 第39页 |
| 2.2.12 免疫荧避（Immunofluorescence） | 第39-40页 |
| 2.2.13 统计学处理 | 第40页 |
| 2.2.14 荧避素酶报告基因的检测 | 第40-41页 |
| 2.2.15 酶联免疫吸附实验(enzyme-linked immunosorbent assay , ELISA) | 第41-42页 |
| 2.2.15.1 检测前期准备 | 第41-42页 |
| 2.2.15.2 具体操作步骤 | 第42页 |
| 3 结果 | 第42-59页 |
| 3.1 LPS诱导ESE1与小胶质细胞以及神经元共定位增加 | 第42-47页 |
| 3.1.1 LPS侧脑室注射导致皮层ESE1表达上调 | 第42-45页 |
| 3.1.2 LPS侧脑室注射引起ESE1与小胶质细胞以及神经元的共定位增加 | 第45-47页 |
| 3.2 ESE1参与LPS诱导的小胶质细胞活化 | 第47-53页 |
| 3.2.1 LPS侧脑室注射使得i NOS表达上调，并且与小胶质细胞共定位增加 | 第47-49页 |
| 3.2.2 ESE1参与LPS诱导的小胶质细胞活化 | 第49-53页 |
| 3.3 ESE1参与LPS诱导的CNS炎症模型中的神经元凋亡的调节 | 第53-59页 |
| 3.3.1 ESE1 在 LPS 侧脑室注射的中枢神经系统炎症模型中凋亡相关 | 第53-55页 |
| 3.3.2 ESE1 与小胶质细胞条件培养基诱导的神经元凋亡正相关 | 第55-57页 |
| 3.3.3 ESE1 通过调节 NF-κB 的活性参与神经元的凋亡调节 | 第57-59页 |
| 4 讨论 | 第59-61页 |
| 5 结论 | 第61-62页 |
| 英文缩略词表 | 第62-65页 |
| 参考文献 | 第65-76页 |
| 附录 | 第76-79页 |
| 致谢 | 第79-80页 |
| 综述 | 第80-94页 |
| 介绍 | 第80-81页 |
| 神经退行性疾病以及损伤中小胶质细胞的研究进展 | 第81-86页 |
| 阿兹海默病（Alzheimer’s disease，AD） | 第81-83页 |
| 其它神经系统退行性疾病 | 第83-85页 |
| 脑损伤中小胶质细胞的参与 | 第85-86页 |
| 小胶质细胞活化的机制 | 第86-87页 |
| 展望 | 第87页 |
| 综述参考文献 | 第87-94页 |
