| 摘要 | 第6-8页 |
| Abstract | 第8-9页 |
| 第一章 绪论 | 第10-12页 |
| 第二章 材料与方法 | 第12-28页 |
| 2.1 实验材料 | 第12-17页 |
| 2.1.1 实验对象 | 第12页 |
| 2.1.2 主要仪器 | 第12-14页 |
| 2.1.3 实验用药 | 第14页 |
| 2.1.4 试剂耗材 | 第14-15页 |
| 2.1.5 试剂配制 | 第15-17页 |
| 2.2 实验流程与方法 | 第17-27页 |
| 2.2.1 细胞培养 | 第17-18页 |
| 2.2.2 细胞冻存 | 第18页 |
| 2.2.3 细胞复苏 | 第18-19页 |
| 2.2.4 MTT法检测细胞活力 | 第19页 |
| 2.2.5 NO浓度测定 | 第19页 |
| 2.2.6 蛋白提取 | 第19-20页 |
| 2.2.7 蛋白定量与配平 | 第20-21页 |
| 2.2.8 Western blot | 第21-22页 |
| 2.2.9 RT-PCR | 第22-25页 |
| 2.2.10 DNA结合力的测定 | 第25-26页 |
| 2.2.11 染色质免疫共沉淀(Ch IP) | 第26-27页 |
| 2.3 统计学分析 | 第27-28页 |
| 第三章 结果 | 第28-45页 |
| 3.1 第一部分HSF1在LPS/IFN-γ 诱导的i NOS生成中的作用 | 第28-32页 |
| 3.1.1 HSF1抑制剂以剂量依赖方式抑制BV-2 小胶质细胞i NOS蛋白表达 | 第28-29页 |
| 3.1.2 HSF1抑制剂以时间依赖方式抑制BV-2 小胶质细胞i NOS蛋白表达 | 第29页 |
| 3.1.3 HSF1抑制剂抑制LPS/IFN-γ 引起的BV-2 细胞NO释放 | 第29-30页 |
| 3.1.4 HSF1抑制剂对LPS/IFN-γ 处理BV-2 小胶质细胞活力的影响 | 第30-31页 |
| 3.1.5 HSF1基因沉默抑制LPS/IFN-γ 诱导的i NOS蛋白表达和NO生成 | 第31-32页 |
| 3.2 第二部分HSF1抑制剂抑制LPS/IFN-γ 诱导的i NOS表达的机制研究 | 第32-45页 |
| 3.2.1 HSF1抑制剂抑制LPS诱导的BV-2 小胶质细胞和原代小鼠小胶质细胞i NOS蛋白表达 | 第32-33页 |
| 3.2.2 HSF1抑制剂抑制LPS引起的原代小胶质细胞i NOS m RNA表达 | 第33-34页 |
| 3.2.3 HSF1抑制剂抑制IFN-γ 诱导的BV-2 小胶质细胞和小鼠原代小胶质细胞i NOS蛋白表达 | 第34-35页 |
| 3.2.4 HSF1抑制剂抑制IFN-γ 引起的原代小胶质细胞i NOS m RNA表达 | 第35-36页 |
| 3.2.5 HSF1抑制剂抑制LPS诱导小鼠脑组织i NOS蛋白表达 | 第36-37页 |
| 3.2.6 HSF1抑制剂抑制LPS诱导小鼠脑组织i NOS m RNA表达 | 第37-38页 |
| 3.2.7 HSF1抑制剂不影响LPS引起的BV-2 细胞IκB-α 降解及NF-κB磷酸化 | 第38-39页 |
| 3.2.8 HSF1抑制剂不影响LPS引起的BV-2 细胞NF-κB细胞核转位 | 第39-40页 |
| 3.2.9 HSF1抑制剂不影响IFN-γ 引起的BV-2 细胞STAT1磷酸化 | 第40-41页 |
| 3.2.10 HSF1抑制剂不影响IFN-γ 引起的BV-2 细胞STAT1细胞核转位 | 第41-42页 |
| 3.2.11 HSF1抑制剂抑制NF-κB、STAT1与DNA结合能力 | 第42-43页 |
| 3.2.12 HSF1抑制剂抑制NF-κB、STAT1与i NOS启动子区DNA结合能力 | 第43-45页 |
| 第四章 讨论 | 第45-48页 |
| 第五章 结论 | 第48-49页 |
| 参考文献 | 第49-52页 |
| 英文缩写词表 | 第52-53页 |
| 综述 | 第53-66页 |
| 参考文献 | 第61-66页 |
| 在攻读硕士学位期间公开发表的论文与参加的项目 | 第66-67页 |
| 致谢 | 第67页 |
