| 摘要 | 第4-7页 |
| Abstract | 第7-10页 |
| 中英文缩略对照表 | 第14-15页 |
| 引言 | 第15-18页 |
| 第一部分 rhMG53对hUC-MSCs氧化损伤的保护作用 | 第18-35页 |
| 前言 | 第18-19页 |
| 1.1 材料与方法 | 第19-25页 |
| 1.1.1 材料与试剂 | 第19-20页 |
| 1.1.2 hUC-MSCs的分离和传代培养 | 第20-21页 |
| 1.1.3 hUC-MSCs氧化损伤模型的建立 | 第21页 |
| 1.1.4 CCK-8 检测对hUC-MSCs增殖的影响 | 第21-22页 |
| 1.1.5 Transwell小室观察rhMG53对hUC-MSCs迁移的影响 | 第22页 |
| 1.1.6 PI染色法检测rhMG53对不同处理hUC-MSCs周期的影响 | 第22-23页 |
| 1.1.7 β-半乳糖苷酶染色检测rhMG53对hUC-MSCs衰老的影响 | 第23页 |
| 1.1.8 FITC –Annexin V /PI染色检测rhMG53对hUC-MSCs凋亡的影响 | 第23页 |
| 1.1.9 分光光度法检测rhMG53对hUC-MSCs的SOD活性和MDA含量影响 | 第23-25页 |
| 1.1.10 统计学处理 | 第25页 |
| 1.2 结果 | 第25-33页 |
| 1.2.1 hUC-MSCs的培养特性 | 第25-26页 |
| 1.2.2 hUC-MSCs免疫表型鉴定 | 第26页 |
| 1.2.3 H2O2氧化损伤hUC-MSCs模型的建立 | 第26-27页 |
| 1.2.4 rhMG53对hUC-MSCs增殖的影响 | 第27-28页 |
| 1.2.5 rhMG53对hUC-MSCs迁移的影响 | 第28-29页 |
| 1.2.6 rhMG53对hUC-MSCs周期的影响 | 第29-30页 |
| 1.2.7 rhMG53对hUC-MSCs衰老的影响 | 第30-31页 |
| 1.2.8 rhMG53对hUC-MSCs凋亡的影响 | 第31-32页 |
| 1.2.9 SOD活性和MDA含量测定 | 第32-33页 |
| 1.3 讨论 | 第33-34页 |
| 1.4 小结 | 第34-35页 |
| 第二部分 rhMG53蛋白联合hUC-MSCs对阿尔茨海默鼠的治疗作用 | 第35-57页 |
| 前言 | 第35-36页 |
| 2.1 材料与方法 | 第36-46页 |
| 2.1.1 材料试剂 | 第36-38页 |
| 2.1.2 APP转基因小鼠的鉴定 | 第38-39页 |
| 2.1.3 APP+实验小鼠的分组处理 | 第39-40页 |
| 2.1.4 免疫组化检测小鼠脑内h UC-MSCs的迁移 | 第40页 |
| 2.1.5 小鼠行为学能力检测 | 第40-41页 |
| 2.1.6 小鼠血清SOD活性MDA含量检测 | 第41-42页 |
| 2.1.7 小鼠脑组织相关衰老基因表达的检测 | 第42-46页 |
| 2.1.8 免疫组化检测不同处理小鼠脑组织神经相关nestin、NSE、DCX表达 | 第46页 |
| 2.1.9 统计学处理 | 第46页 |
| 2.2 结果 | 第46-53页 |
| 2.2.1 APP转基因小鼠的鉴定 | 第46-47页 |
| 2.2.2 免疫组化检测小鼠脑内h UC-MSCs的迁移 | 第47-48页 |
| 2.2.3 小鼠的行为学能力检测 | 第48-50页 |
| 2.2.4 各组小鼠血清中SOD活性及MDA含量的检测 | 第50页 |
| 2.2.5 各组小鼠脑组织中衰老相关基因mRNA和蛋白表达的检测 | 第50-52页 |
| 2.2.6 各组小鼠脑组织中神经相关Nestin、NSE、DCX表达的检测 | 第52-53页 |
| 2.3 讨论 | 第53-56页 |
| 2.4 小结 | 第56-57页 |
| 结论 | 第57-58页 |
| 参考文献 | 第58-64页 |
| 综述 MG53蛋白参与细胞和组织的损伤修复 | 第64-74页 |
| 参考文献 | 第72-74页 |
| 附录 实验主要设备及耗材 | 第74-75页 |
| 个人简历 | 第75页 |
| 硕士期间发表论文及获奖情况 | 第75-77页 |
| 致谢 | 第77页 |
