| 英文缩略词 | 第6-8页 |
| 中文摘要 | 第8-10页 |
| Abstract | 第10-11页 |
| 1 前言 | 第12-14页 |
| 2 实验材料 | 第14-17页 |
| 2.1 动物 | 第14页 |
| 2.2 试剂 | 第14-15页 |
| 2.3 主要仪器 | 第15-16页 |
| 2.4 溶液和试剂的配制 | 第16-17页 |
| 3 实验方法 | 第17-26页 |
| 3.1 小鼠AA模型的建立 | 第17页 |
| 3.2 AA模型的确立 | 第17-18页 |
| 3.3 小鼠滑膜细胞的分离与培养 | 第18-19页 |
| 3.4 qRT-PCR | 第19-21页 |
| 3.5 Western Blot | 第21-23页 |
| 3.6 免疫荧光单染检测FLS中NLRC5的表达水平 | 第23-24页 |
| 3.7 免疫组织化学检测滑膜组织中NLRC5的表达水平 | 第24页 |
| 3.8 酶联免疫吸附试验检测IL-1β,IL-6,TNF-α | 第24-25页 |
| 3.9 统计学分析 | 第25-26页 |
| 4 实验结果 | 第26-35页 |
| 4.1 大鼠AA模型的确立 | 第26-28页 |
| 4.2 AA小鼠滑膜组织及原代提取滑膜细胞中NLRC5的蛋白表达水平 | 第28-30页 |
| 4.3 TNF-α诱导成纤维样滑膜细胞中NLRC5的表达 | 第30-31页 |
| 4.4 NLRC5-siRNA明显沉默由TNF-α诱导的NLRC5表达 | 第31-32页 |
| 4.5 敲除NLRC5通过激活NF-KB通路进而促进TNF-α诱导的成纤维样滑膜细胞炎症因子IL-6和IL-1β的表达 | 第32-33页 |
| 4.6 TNF-α通过调控NF-κB的活化进而促进NLRC5的表达 | 第33-35页 |
| 5 讨论 | 第35-37页 |
| 结论 | 第37-38页 |
| 参考文献 | 第38-41页 |
| 附录 | 第41-42页 |
| 致谢 | 第42-43页 |
| 综述 | 第43-53页 |
| 参考文献 | 第48-53页 |
