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穿膜蛋白R9-EGFP纯化工艺优化及小鼠体内分布探究

摘要第5-6页
Abstract第6-7页
第1章 绪论第11-23页
    1.1 前言第11页
    1.2 细胞穿膜肽研究进展第11-12页
    1.3 重组蛋白标签研究进展第12-16页
        1.3.1 MBP-tag第13页
        1.3.2 GST-tag第13-14页
        1.3.3 SUMO-tag第14-15页
        1.3.4 TrxA-tag第15页
        1.3.5 NusA-tag第15页
        1.3.6 His-tag第15-16页
    1.4 重组蛋白表达系统研究进展第16-18页
        1.4.1 原核表达系统第16-17页
        1.4.2 真核表达系统第17-18页
    1.5 蛋白纯化常用方法第18-20页
        1.5.1 差速离心第18页
        1.5.2 固定化金属离子亲和层析(IMAC)第18-19页
        1.5.3 不同浓度饱和硫酸氨沉淀法第19页
        1.5.4 AKTA purifier 100纯化系统第19-20页
    1.6 本论文的研究背景、意义及研究内容第20-23页
        1.6.1 研究背景第20页
        1.6.2 研究意义第20-21页
        1.6.3 研究内容第21-23页
第2章 细胞穿膜蛋白R_9-EGFP的原核诱导表达条件工艺优化第23-32页
    2.1 前言第23页
    2.2 实验试剂第23-24页
    2.3 实验仪器第24-25页
    2.4 实验方法第25-29页
        2.4.1 质粒大提第25-26页
        2.4.2 细胞穿膜蛋白R_9-EGFP原核诱导表达条件的摸索第26-29页
    2.5 细胞穿膜蛋白R_9-EGFP原核诱导表达条件结果与分析第29-31页
        2.5.1 细胞穿膜蛋白R_9-EGFP原核诱导表达正交表达结果第29-31页
    2.6 小结第31-32页
第3章 细胞穿膜蛋白R_9-EGFP的工艺纯化第32-37页
    3.1 前言第32页
    3.2 实验试剂第32-33页
    3.3 实验仪器第33页
    3.4 实验方法第33-34页
        3.4.1 AKTA purifier 100工艺纯化第33-34页
        3.4.2 蛋白浓度测定(Bradford法)第34页
        3.4.3 蛋白样品处理第34页
        3.4.4 考马斯亮蓝实验分析纯度第34页
    3.5 实验结果与分析第34-36页
        3.5.1 细胞穿膜蛋白R_9-EGFP纯化结果(定性分析)第34-35页
        3.5.2 细胞穿膜蛋白R_9-EGFP纯化结果第35-36页
    3.6 小结第36-37页
第4章 细胞穿膜蛋白R_9-EGFP穿膜效率检测第37-43页
    4.1 前言第37页
    4.2 实验试剂第37-38页
    4.3 实验仪器第38页
    4.4 实验方法第38-40页
        4.4.1 细胞传代培养第38页
        4.4.2 细胞的复苏第38-39页
        4.4.3 细胞的冻存第39页
        4.4.4 细胞计数第39-40页
        4.4.5 CCK-8检测第40页
        4.4.6 流式细胞术检测样品处理第40页
    4.5 实验结果及分析第40-42页
        4.5.1 CCK-8检测结果第40-41页
        4.5.2 流式细胞检测结果第41-42页
    4.6 小结第42-43页
第5章 细胞穿膜蛋白R_9-EGFP在小鼠体内分布研究第43-47页
    5.1 前言第43-44页
    5.2 实验试剂第44页
    5.3 实验仪器第44页
    5.4 实验方法第44-45页
        5.4.1 尾静脉注射第44-45页
        5.4.2 小鼠解剖第45页
    5.5 实验结果第45-46页
    5.6 小结第46-47页
结论与展望第47-48页
参考文献第48-57页
附录A 英文缩写第57-58页
附录B 常用缓冲液和试剂配方第58-60页
致谢第60页

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