| 缩略语表 | 第7-8页 |
| 中文摘要 | 第8-12页 |
| 英文摘要 | 第12-15页 |
| 前言 | 第16-18页 |
| 文献回顾 | 第18-35页 |
| 实验一 壳聚糖搭载两种小干扰RNA对大鼠骨髓间充质干细胞成骨成血管分化的作用 | 第35-46页 |
| 1 材料 | 第36页 |
| 1.1 实验动物 | 第36页 |
| 1.2 实验试剂 | 第36页 |
| 1.3 实验器材 | 第36页 |
| 2 方法 | 第36-39页 |
| 2.1 壳聚糖凝胶制备 | 第36-37页 |
| 2.2 搭载siRNA支架材料制备 | 第37页 |
| 2.3 搭载siRNA的支架材料降解曲线 | 第37页 |
| 2.4 细胞培养鉴定 | 第37页 |
| 2.5 细胞附着和增殖 | 第37-38页 |
| 2.6 siRNA和细胞的共区域化 | 第38页 |
| 2.7 RT-qPCR分析检测靶基因及成骨成血管基因表达 | 第38页 |
| 2.8 免疫荧光检测成骨成血管相关蛋白表达 | 第38页 |
| 2.9 细胞外基质矿化 | 第38-39页 |
| 2.10 数据分析 | 第39页 |
| 3 结果 | 第39-44页 |
| 3.1 搭载siRNA后壳聚糖凝胶的表征 | 第39-40页 |
| 3.2 细胞表型鉴定结果 | 第40-41页 |
| 3.3 细胞附着和增殖 | 第41-42页 |
| 3.4 si RNA 和细胞的共区域化 | 第42-43页 |
| 3.5 RT-qPCR分析检测结果 | 第43页 |
| 3.6 细胞外基质矿化与免疫荧光分析 | 第43-44页 |
| 4 讨论 | 第44-46页 |
| 实验二 体内植入搭载两种小干扰RNA的壳聚糖对大鼠颅骨缺损修复的作用 | 第46-50页 |
| 1 材料 | 第46-47页 |
| 1.1 实验动物 | 第46页 |
| 1.2 实验试剂 | 第46页 |
| 1.3 实验器材 | 第46-47页 |
| 2 方法 | 第47页 |
| 2.1 支架材料植入大鼠颅骨缺损区域 | 第47页 |
| 2.2 Micro-CT检测成骨效果 | 第47页 |
| 2.3 Van Gieson染色 | 第47页 |
| 2.4 数据分析 | 第47页 |
| 3 结果 | 第47-48页 |
| 3.1 颅骨缺损再生效果 | 第47-48页 |
| 4 讨论 | 第48-50页 |
| 实验三CGRP对大鼠间充质干细胞迁移，增殖和成骨分化的影响 | 第50-57页 |
| 1 材料 | 第50-51页 |
| 1.1 实验动物 | 第50页 |
| 1.2 实验试剂 | 第50-51页 |
| 1.3 实验器材 | 第51页 |
| 2 方法 | 第51-52页 |
| 2.1 细胞分离培养鉴定 | 第51页 |
| 2.2 CGRP对BMSCs中SDF-1 的分泌和表达的影响 | 第51页 |
| 2.3 Transwell检测CGRP对BMSCs迁移能力的促进作用 | 第51-52页 |
| 2.4 BrdU检测CGRP对BMSCs增殖能力的促进作用 | 第52页 |
| 2.5 CGRP对BMSCs成骨分化的作用 | 第52页 |
| 2.6 数据分析 | 第52页 |
| 3 结果 | 第52-56页 |
| 3.1 CGRP对大鼠BMSCs分泌SDF-1 和SDF-1mRNA表达的影响 | 第52-53页 |
| 3.2 CGRP对大鼠BMSCs迁移能力的影响 | 第53-54页 |
| 3.3 CGRP对大鼠BMSCs增殖能力的影响 | 第54页 |
| 3.4 CGRP对BMSCs成骨分化的作用 | 第54-56页 |
| 4 讨论 | 第56-57页 |
| 实验四 局部注射降钙素基因相关肽CGRP对SD大鼠下颌骨单侧牵张成骨效果的影响 | 第57-65页 |
| 1 材料 | 第57-58页 |
| 1.1 实验动物 | 第57页 |
| 1.2 实验试剂 | 第57页 |
| 1.3 手术器械 | 第57-58页 |
| 1.4 主要材料及仪器 | 第58页 |
| 2 方法 | 第58-60页 |
| 2.1 牵张器植入术 | 第58-59页 |
| 2.2 动物分组及标本获得 | 第59页 |
| 2.3 Micro-CT分析 | 第59页 |
| 2.4 组织形态学观察及定量分析 | 第59页 |
| 2.5 数据分析 | 第59-60页 |
| 3 结果 | 第60-63页 |
| 3.1 大体标本观察 | 第60页 |
| 3.2 Micro-CT分析 | 第60-62页 |
| 3.3 骨组织学观察 | 第62-63页 |
| 4 讨论 | 第63-65页 |
| 实验五 局部应用CGRP对下颌骨牵张中间充质干细胞动员的作用 | 第65-71页 |
| 1 材料 | 第65-66页 |
| 1.1 实验动物 | 第65页 |
| 1.2 实验试剂 | 第65-66页 |
| 1.3 手术器械 | 第66页 |
| 1.4 主要材料及仪器 | 第66页 |
| 2 方法 | 第66-67页 |
| 2.1 手术步骤 | 第66页 |
| 2.2 免疫组织化学检测Nestin表达 | 第66-67页 |
| 2.3 外周血CD29阳性细胞计数 | 第67页 |
| 2.4 外周血中SDF-1 含量检测 | 第67页 |
| 2.5 qRT-RCR检测牵张区SDF-1mRNA的表达 | 第67页 |
| 2.6 数据分析 | 第67页 |
| 3 结果 | 第67-69页 |
| 3.1 免疫组织化学法检测Nestin的表达 | 第67-68页 |
| 3.2 外周血CD29阳性细胞数量 | 第68-69页 |
| 3.3 外周血中的SDF-1 的表达 | 第69页 |
| 3.4 牵张区骨组织SDF-1mRNA表达 | 第69页 |
| 4 讨论 | 第69-71页 |
| 小结 | 第71-73页 |
| 参考文献 | 第73-92页 |
| 个人简历和研究成果 | 第92-93页 |
| 致谢 | 第93页 |
