| 摘要 | 第6-10页 |
| Abstract | 第10-14页 |
| 主要符号表 | 第15-16页 |
| 第一章 绪论 | 第16-19页 |
| 第二章 病例和方法 | 第19-31页 |
| 2.1 研究对象、实验器材及试剂 | 第19-21页 |
| 2.1.1 研究对象病理资料采集 | 第19页 |
| 2.1.2 纳入标准 | 第19-20页 |
| 2.1.3 排除标准 | 第20页 |
| 2.1.4 实验所用细胞系 | 第20页 |
| 2.1.5 主要仪器 | 第20-21页 |
| 2.1.6 主要试剂 | 第21页 |
| 2.2 研究方法 | 第21-30页 |
| 2.2.1 临床病理指标的收集 | 第21页 |
| 2.2.2 宫颈脱落细胞HPV核酸检测 | 第21-22页 |
| 2.2.3 同步放化疗方案 | 第22页 |
| 2.2.4 免疫组织化学染色 | 第22-23页 |
| 2.2.5 细胞培养 | 第23-24页 |
| 2.2.6 细胞电离辐射 | 第24页 |
| 2.2.7 实时定量PCR扩增分析 | 第24-25页 |
| 2.2.8 Western Blot免疫蛋白印迹 | 第25-28页 |
| 2.2.9 细胞脂质体转染miRNA及电离辐射 | 第28-29页 |
| 2.2.10 MTT比色法及流式细胞技术检测细胞凋亡 | 第29页 |
| 2.2.11 随机对宫颈癌患者进行随访以及生存分析 | 第29-30页 |
| 2.3 统计学分析 | 第30-31页 |
| 第三章 结果 | 第31-41页 |
| 3.1 入组患者的临床病理特征 | 第31-32页 |
| 3.2 Rsf-1/HBXAP基因在宫颈组织中免疫组化染色结果及分析 | 第32-35页 |
| 3.2.1 Rsf-1/HBXAP基因在宫颈组织中免疫组化染色结果及分析 | 第32-33页 |
| 3.2.2 CIN组织不同分级间Rsf-1/HBXAP染色差异 | 第33页 |
| 3.2.3 Rsf-1/HBXAP在不同临床病理特征的宫颈癌组织间染色差异 | 第33-34页 |
| 3.2.4 宫颈癌组织在放射治疗前后Rsf-1/HBXAP染色的差异 | 第34-35页 |
| 3.3 实时定量PCR扩增结果及分析 | 第35-36页 |
| 3.3.1 宫颈癌细胞系以及正常组织细胞系中Rsf-1/HBXAP m RNA表达差异 | 第35页 |
| 3.3.2 Hela细胞系在电离辐射前后Rsf-1/HBXAP mRNA表达差异 | 第35-36页 |
| 3.4 Western Blotting蛋白印迹结果及分析 | 第36-37页 |
| 3.4.1 Rsf-1/HBXAP蛋白在不同细胞系中含量的差异 | 第36-37页 |
| 3.4.2 宫颈癌细胞系电离辐射前后Rsf-1/HBXAP蛋白含量的差异 | 第37页 |
| 3.5 RNA干扰在影响HeLa细胞电离辐射敏感性中的作用 | 第37-39页 |
| 3.5.1 荧光实时定量PCR检测Hela细胞中miR-21转染情况 | 第37-38页 |
| 3.5.2 MTT比色法检测miR-21转染后对电离辐射下细胞存活的影响 | 第38页 |
| 3.5.3 miR-21在电离辐射下影响细胞凋亡的结果 | 第38-39页 |
| 3.6 Rsf-1/HBXAP基因表达程度对宫颈癌患者生存的影响 | 第39-41页 |
| 第四章 讨论 | 第41-49页 |
| 第五章 结论 | 第49-50页 |
| 参考文献 | 第50-55页 |
| 第六章 综述 | 第55-79页 |
| 参考文献 | 第69-79页 |
| 攻读学位期间发表的论文及学术成果 | 第79-80页 |
| 致谢 | 第80页 |
