中文摘要 | 第5-9页 |
ABSTRACT | 第9-11页 |
第一章 绪论 | 第16-40页 |
1. 基质金属蛋白酶(MATRIX METALLOPROREINASES,MMPs) | 第16-27页 |
1.1 细胞外基质(Extracellular Matrix,ECM) | 第16-17页 |
1.2 基质金属蛋白酶(Matrix Metalloproreinases,MMPs) | 第17-27页 |
2. MMPS抑制剂(MMPI)的研究现状 | 第27-29页 |
3. 传统中药的研究开发及背景介绍 | 第29-34页 |
3.1 传统中药的研究现状 | 第29-30页 |
3.2 研究传统中药有效成分的研究方法 | 第30-34页 |
4. 一些中药的研究开发以及MMPs在其中的重要作用 | 第34-37页 |
5. 本实验的设计思路和流程 | 第37-40页 |
第二章 材料与方法 | 第40-52页 |
2.1 实验中所用的药品和试剂 | 第40-41页 |
2.2 仪器使用 | 第41页 |
2.3 配制的各种溶液及缓冲液体系 | 第41-45页 |
2.4 实验方法 | 第45-52页 |
2.4.1 中药关白附初级分离产物的制备 | 第45页 |
2.4.2 利用ls-103型和D101型大孔树脂分离的方法 | 第45-47页 |
2.4.3 样品进一步纯化的重结晶过程 | 第47页 |
2.4.4 MMPs酶学抑制实验的活性检测 | 第47-48页 |
2.4.5 对关白附和其中活性单体金属元素含量的测定 | 第48页 |
2.4.6 红外光谱检测 | 第48-50页 |
2.4.7 X-射线单晶衍射 | 第50-51页 |
2.4.8 细胞行为学方法对MMPs抑制剂抑制效果的检测 | 第51-52页 |
第三章 实验结果与讨论 | 第52-88页 |
3.1 关白附有效成分体外存在形式的探寻、分离纯化及活性跟踪 | 第52-56页 |
3.1.1 关白附水相提取物与醇沉物对MMP-16活性的抑制 | 第52-53页 |
3.1.2 利用大孔树脂对醇沉的水层溶液进一步分离 | 第53-55页 |
3.1.3 关白附水层提取物的结晶过程和活性跟踪 | 第55-56页 |
3.2 白色晶体的结构分析 | 第56-62页 |
3.2.1 红外特征峰吸收检测结果 | 第56-57页 |
3.2.2 白色晶体的元素分析及性质鉴定 | 第57-58页 |
3.2.3 白色晶体和关白附当中各种金属元素含量的ICP元素表征 | 第58-59页 |
3.2.4 X-射线单晶衍射单体的结构表征 | 第59-62页 |
3.3 关白附活性成分的体外存在形式在酶学水平对MMPs的抑制情况 | 第62-64页 |
3.4 NH_4AL(SO_4)_2·12H_2O对HT1080细胞行为学指标的影响 | 第64-71页 |
3.4.1 NH_4Al(SO_4)_2·12H_2O对HT1080细胞活力的影响 | 第65页 |
3.4.2 NH_4Al(SO_4)_2·12H_2O对HT1080细胞粘附能力的影响 | 第65-66页 |
3.4.3 NH_4Al(SO_4)_2·12H_2O对HT1080细胞伸展能力的影响 | 第66-69页 |
3.4.4 NH_4Al(SO_4)_2·12H_2O对HT1080细胞迁移能力的影响 | 第69-70页 |
3.4.5 NH_4Al(SO_4)_2·12H_2O对HT1080细胞侵袭能力的影响 | 第70-71页 |
3.5 NH_4AL(SO_4)_2·12H_2O中抑制MMPs的活性基团的检测 | 第71-80页 |
3.5.1 活性基团的酶学水平检测 | 第71-73页 |
3.5.2 活性基团的细胞学水平检测 | 第73-80页 |
3.6 三价离子盐类以及一些复盐对MMPs抑制作用的进一步探究 | 第80-81页 |
3.7 K_3[FE(CN)_6]对HT1080细胞的典型细胞行为的影响 | 第81-88页 |
3.7.1 K_3[Fe(CN)_6]对HT1080细胞的细胞活力的影响 | 第82页 |
3.7.2 K_3[Fe(CN)_6]对HT1080细胞的迁移能力的影响 | 第82-84页 |
3.7.3 K_3[Fe(CN)_6]对HT1080细胞的侵袭能力的影响 | 第84-88页 |
第四章 结论及工作展望 | 第88-92页 |
参考文献 | 第92-102页 |
攻读学位期间发表的论文 | 第102-104页 |
致谢 | 第104-105页 |