摘要 | 第3-5页 |
abstract | 第5-6页 |
中英文缩略词表 | 第9-10页 |
第1章 前言 | 第10-12页 |
第2章 材料与研究方法及步骤 | 第12-24页 |
2.1 材料 | 第12-13页 |
2.1.1 实验动物 | 第12页 |
2.1.2 主要试剂及仪器 | 第12-13页 |
2.2 研究方法及步骤 | 第13-24页 |
2.2.1 血清的收集 | 第13页 |
2.2.2 实验所需主要溶液的配置 | 第13-14页 |
2.2.3 动物饲养及造模 | 第14页 |
2.2.4 动物模型判断 | 第14-15页 |
2.2.5 实验分组及干预 | 第15-16页 |
2.2.6 各组肾组织标本收集 | 第16页 |
2.2.7 肾组织蛋白制备及western blot | 第16-19页 |
2.2.8 肾组织总RNA提取及荧光定量PCR(Real-time PCR) | 第19-22页 |
2.2.9 肾组织单细胞悬液的制备及流式细胞术 | 第22-23页 |
2.2.10 统计学分析 | 第23-24页 |
第3章 结果 | 第24-30页 |
3.1 模型的判断 | 第24-25页 |
3.1.1 模型及健康小鼠尿蛋白的检测 | 第24页 |
3.1.2 模型及健康小鼠肾组织病理染色(HE、PAS)结果 | 第24-25页 |
3.1.3 模型及健康小鼠肾组织HBsAg免疫荧光结果 | 第25页 |
3.2 肾组织中各蛋白及MRNA的表达变化 | 第25-28页 |
3.2.1 Western blot检测各组肾组织中TLR3、TRIF、p-IRF3、IFN-β蛋白的相对表达 | 第25-27页 |
3.2.2 荧光定量PCR检测各组肾组织中TLR3、TRIF、IRF3、IFN-β mRNA相对表达量 | 第27-28页 |
3.3 肾组织中DC的变化 | 第28-30页 |
3.3.1 流式细胞术检测各组肾组织中DC的变化 | 第28-30页 |
第4章 讨论 | 第30-36页 |
4.1 HBV-GN小鼠模型的建立 | 第30-31页 |
4.2 肾组织单细胞悬液的制备 | 第31页 |
4.3 TLRS与HBV-GN | 第31-32页 |
4.4 DC与HBV-GN | 第32-34页 |
4.5 HBV-GN的治疗 | 第34-36页 |
第5章 结论 | 第36-37页 |
致谢 | 第37-38页 |
参考文献 | 第38-41页 |
攻读学位期间的研究成果 | 第41-42页 |
综述 | 第42-50页 |
参考文献 | 第47-50页 |