| 摘要 | 第4-6页 |
| ABSTRACT | 第6-7页 |
| 缩略词表(Abbreviations) | 第8-16页 |
| 第一章 绪论 | 第16-33页 |
| 1.1 拉曼光谱简介 | 第16-17页 |
| 1.2 表面增强拉曼光谱 | 第17-26页 |
| 1.2.1 SERS增强机理 | 第17-19页 |
| 1.2.2 SERS特点 | 第19-20页 |
| 1.2.3 SERS基底的研究进展 | 第20-24页 |
| 1.2.4 SERS技术的应用研究进展 | 第24-26页 |
| 1.3 SERS技术与免疫分析方法的联用 | 第26-31页 |
| 1.3.1 免疫学基本概念 | 第26-28页 |
| 1.3.2 现代免疫分析技术 | 第28-31页 |
| 1.3.3 表面增强拉曼光谱联合免疫分析技术 | 第31页 |
| 1.4 本文研究意义及主要内容 | 第31-33页 |
| 第二章 基于AgNPs聚集体建立BPA的SERS免标记检测方法 | 第33-49页 |
| 2.1 前言 | 第33-37页 |
| 2.2 材料与设备 | 第37-38页 |
| 2.2.1 主要试剂与材料 | 第37页 |
| 2.2.2 主要溶液的配置 | 第37页 |
| 2.2.3 主要仪器与设备 | 第37-38页 |
| 2.3 实验方法 | 第38-40页 |
| 2.3.1 纳米银溶胶的制备及表征 | 第38-39页 |
| 2.3.2 BPA拉曼光谱和表面增强拉曼光谱检测 | 第39页 |
| 2.3.3 pH值对BPA的SERS的影响 | 第39页 |
| 2.3.4 NaCl对BPA的SERS的影响 | 第39-40页 |
| 2.3.5 SERS技术检测BPA的灵敏度 | 第40页 |
| 2.4 结果与分析 | 第40-48页 |
| 2.4.1 纳米银溶胶的紫外光谱、扫描电镜和粒度分布 | 第40-41页 |
| 2.4.2 BPA普通拉曼光谱和SERS光谱 | 第41-42页 |
| 2.4.3 NaCl对BPA的SERS影响 | 第42-45页 |
| 2.4.4 pH值对BPA的SERS信号的影响 | 第45-46页 |
| 2.4.5 SERS技术检测不同浓度的BPA | 第46-47页 |
| 2.4.6 银溶胶对BPA的SERS增强机理 | 第47-48页 |
| 2.5 本章小结 | 第48-49页 |
| 第三章 基于AgNPs负载的滤膜SERS基底建立BPA的高灵敏检测方法 | 第49-65页 |
| 3.1 引言 | 第49-53页 |
| 3.2 实验材料及设备 | 第53-54页 |
| 3.2.1 实验材料 | 第53页 |
| 3.2.2 仪器及设备 | 第53-54页 |
| 3.3 实验方法 | 第54-56页 |
| 3.3.1 AgNPs负载的滤膜SERS基底的制备 | 第54页 |
| 3.3.2 AgNPs负载的滤膜SERS基底的表征 | 第54-55页 |
| 3.3.3 Cys修饰AgNPs负载的滤膜SERS基底及对BPA的富集检测 | 第55-56页 |
| 3.4 结果与分析 | 第56-64页 |
| 3.4.1 AgNPs负载的滤膜SERS基底的形貌表征 | 第56页 |
| 3.4.2 AgNPs负载的滤膜SERS基底的表面增强拉曼效应表征 | 第56-59页 |
| 3.4.3 Cys辅助SERS技术检测BPA | 第59-64页 |
| 3.5 本章小结 | 第64-65页 |
| 第四章 基于SERS标记免疫分析技术建立BPA的高灵敏检测方法 | 第65-87页 |
| 4.1 引言 | 第65-69页 |
| 4.1.1 SERS标记免疫分析技术(SERSIA) | 第65-66页 |
| 4.1.2 常用的拉曼标记分子 | 第66页 |
| 4.1.3 基于竞争法的SERSIA技术 | 第66-67页 |
| 4.1.4 Au/Ag核壳复合纳米粒子用于SERSIA技术 | 第67-68页 |
| 4.1.5 本章主要内容 | 第68-69页 |
| 4.2 试剂、材料及仪器 | 第69-71页 |
| 4.2.1 主要试剂及材料 | 第69-70页 |
| 4.2.2 主要仪器与设备 | 第70-71页 |
| 4.3 实验方法 | 第71-76页 |
| 4.3.1 Au/Ag核壳纳米粒子(Au/Ag NPs)的制备 | 第71页 |
| 4.3.2 4MBA标记Au/Ag NPs | 第71-72页 |
| 4.3.3 4MBA-Au/Ag NPs-抗BPA免疫探针的制备 | 第72页 |
| 4.3.4 条件优化 | 第72-73页 |
| 4.3.5 构建基于竞争免疫法的SERSIA技术检测BPA | 第73-76页 |
| 4.4 结果与讨论 | 第76-85页 |
| 4.4.1 紫外吸收光谱和扫描电镜表征 | 第76-77页 |
| 4.4.2 Au/Ag NPs的SERS表征 | 第77-78页 |
| 4.4.3 拉曼探针标记量的确定 | 第78-79页 |
| 4.4.4 拉曼探针标记时间的选择 | 第79-80页 |
| 4.4.5 基于竞争免疫法SERSIA技术检测BPA的研究 | 第80-85页 |
| 4.5 本章小结 | 第85-87页 |
| 第五章 基于SERS联合胶体金免疫层析技术建立BPA的快速定量分析方法 | 第87-112页 |
| 5.1 引言 | 第87-92页 |
| 5.1.1 胶体金免疫层析法概述 | 第87-89页 |
| 5.1.2 基于SERS技术联合胶体金免疫层析法(SERS-GICA) | 第89-91页 |
| 5.1.3 本章主要研究内容 | 第91-92页 |
| 5.2 试剂、材料及仪器 | 第92-94页 |
| 5.2.1 主要试剂及材料 | 第92-93页 |
| 5.2.2 主要仪器与设备 | 第93-94页 |
| 5.2.3 主要溶液的配置 | 第94页 |
| 5.3 实验方法 | 第94-99页 |
| 5.3.1 胶体金的制备 | 第94-95页 |
| 5.3.2 拉曼标记胶体金免疫探针的制备 | 第95页 |
| 5.3.3 免疫层析试纸条的组装 | 第95页 |
| 5.3.4 GICA试纸条定性检测BPA | 第95-96页 |
| 5.3.5 SERS信号采集 | 第96页 |
| 5.3.6 实验条件的优化 | 第96-97页 |
| 5.3.7 SERS-GICA试纸条功能性测试 | 第97-98页 |
| 5.3.8 环境样品的检测 | 第98页 |
| 5.3.9 样品加标回收实验 | 第98页 |
| 5.3.10 HPLC法检测BPA | 第98-99页 |
| 5.4 结果与讨论 | 第99-111页 |
| 5.4.1 SERS-GICA原理 | 第99-100页 |
| 5.4.2 胶体金的表征 | 第100页 |
| 5.4.3 最佳pH值的确定 | 第100-101页 |
| 5.4.4 最适抗体滴度的确定 | 第101页 |
| 5.4.5 最佳包被抗原浓度和滴加探针量的确定 | 第101-102页 |
| 5.4.6 SERS-GICA检测BPA的非特异性吸附测试 | 第102-103页 |
| 5.4.7 SERS-GICA定量检测BPA方法的建立 | 第103-106页 |
| 5.4.8 SERS-GICA方法检测BPA的特异性实验结果 | 第106-107页 |
| 5.4.9 试纸条稳定性的考察 | 第107-108页 |
| 5.4.10 试纸条精密度考察 | 第108-109页 |
| 5.4.11 实际样品检测和加标回收实验 | 第109-111页 |
| 5.5 本章小结 | 第111-112页 |
| 第六章 基于SERS联合双抗原夹心酶联免疫法建立HCV-Ab的高灵敏检测方法 | 第112-125页 |
| 6.1 引言 | 第112-114页 |
| 6.2 试剂、材料及仪器 | 第114-115页 |
| 6.2.1 主要试剂及材料 | 第114-115页 |
| 6.2.2 主要溶液的配置 | 第115页 |
| 6.2.3 主要仪器与设备 | 第115页 |
| 6.3 实验方法 | 第115-116页 |
| 6.3.1 银溶胶的制备 | 第115页 |
| 6.3.2 SERS-HRP酶促反应体系的建立 | 第115-116页 |
| 6.3.3 双抗原夹心SERS-ELISA法检测HCV-Ab | 第116页 |
| 6.4 结果与讨论 | 第116-124页 |
| 6.4.1 SERS-HRP酶促反应的原理 | 第116-119页 |
| 6.4.2 HRP酶浓度与SERS信号强度的关系 | 第119-120页 |
| 6.4.3 体系pH值对酶促反应产物SERS的影响 | 第120-121页 |
| 6.4.4 酶促产物与银溶胶的配比 | 第121-122页 |
| 6.4.5 双抗原夹心SERS-ELISA检测HCV-Ab方法的建立 | 第122-124页 |
| 6.5 本章小结 | 第124-125页 |
| 结论 | 第125-127页 |
| 参考文献 | 第127-147页 |
| 攻读学位期间发表的论文 | 第147-149页 |
| 致谢 | 第149页 |
