| 摘要 | 第5-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 第一章 绪论 | 第12-27页 |
| 1.1 脂肪酶 | 第12-13页 |
| 1.1.1 脂肪酶的性质 | 第12页 |
| 1.1.2 脂肪酶在自然界的的分布 | 第12-13页 |
| 1.2 全细胞催化剂 | 第13-18页 |
| 1.2.1 全细胞催化剂的概述 | 第13页 |
| 1.2.2 全细胞催化剂的来源和制备条件 | 第13-14页 |
| 1.2.3 全细胞脂肪酶的应用 | 第14-16页 |
| 1.2.4 有机溶剂的毒性作用 | 第16-17页 |
| 1.2.5 微生物对有机溶剂的耐受机制 | 第17-18页 |
| 1.2.5.1 细胞膜的耐受机制 | 第17-18页 |
| 1.2.5.2 细胞膜上的溶剂泵出机制 | 第18页 |
| 1.2.5.3 细胞内的有机溶剂转化和降解 | 第18页 |
| 1.3 非水相生物催化 | 第18-20页 |
| 1.3.1 非水相生物催化的概述 | 第18-19页 |
| 1.3.2 非水相介质 | 第19-20页 |
| 1.4 儿茶素类化合物 | 第20-23页 |
| 1.4.1 儿茶素的概述 | 第20-21页 |
| 1.4.2 儿茶素的生理活性 | 第21页 |
| 1.4.3 儿茶素的改性方法研究现状 | 第21-23页 |
| 1.5 非酯型儿茶素 | 第23-25页 |
| 1.5.1 非酯型儿茶素与茶叶口感 | 第23-24页 |
| 1.5.2 非酯型儿茶素和皮肤渗透率 | 第24-25页 |
| 1.6 本研究的意义和主要内容 | 第25-27页 |
| 第二章 脂肪酶促非酯型儿茶素酰化反应的研究 | 第27-46页 |
| 2.1 试验材料 | 第27页 |
| 2.1.1 脂肪酶 | 第27页 |
| 2.1.2 主要试剂 | 第27页 |
| 2.2 主要仪器设备 | 第27-28页 |
| 2.3 试验方法 | 第28-31页 |
| 2.3.1 高效液相色谱（HPLC）分析 | 第28页 |
| 2.3.1.1 初速度V0值 | 第28页 |
| 2.3.1.2 底物转化率 | 第28页 |
| 2.3.2 脂肪酶的筛选 | 第28-29页 |
| 2.3.3 反应时间对Lipozyme IM RM催化非酯型儿茶素酰化反应的影响 | 第29页 |
| 2.3.4 反应温度对Lipozyme IM RM催化非酯型儿茶素酰化反应的影响 | 第29页 |
| 2.3.5 Lipozyme IM RM的用量对酶促非酯型儿茶素酰化反应的影响 | 第29页 |
| 2.3.6 振荡速度对Lipozyme IM RM催化非酯型儿茶素酰化反应的影响 | 第29-30页 |
| 2.3.7 底物摩尔比对Lipozyme IM RM催化非酯型儿茶素酰化反应的影响 | 第30页 |
| 2.3.8 水分含量对Lipozyme IM RM催化非酯型儿茶素酰化反应的影响 | 第30页 |
| 2.3.9 有机溶剂中Lipozyme IM RM催化反应操作稳定性的研究 | 第30页 |
| 2.3.10 有机溶剂中Lipozyme IM RM催化非酯型儿茶素酰化反应放大的研究 | 第30-31页 |
| 2.3.11 产物分离纯化与结构鉴定 | 第31页 |
| 2.4 结果与分析 | 第31-44页 |
| 2.4.1 不同种类脂肪酶在非酯型儿茶素酰化反应中的催化行为 | 第31-32页 |
| 2.4.2 反应产物的结构鉴定 | 第32-34页 |
| 2.4.3 Lipozyme IM RM催化非酯型儿茶素酰化反应的反应历程 | 第34-36页 |
| 2.4.4 反应温度对Lipozyme IM RM催化非酯型儿茶素酰化反应的影响 | 第36-37页 |
| 2.4.5 Lipozyme IM RM的用量对酶促非酯型儿茶素酰化反应的影响 | 第37-39页 |
| 2.4.6 振荡速度对Lipozyme IM RM催化非酯型儿茶素酰化反应的影响 | 第39-40页 |
| 2.4.7 底物摩尔比对Lipozyme IM RM催化非酯型儿茶素酰化反应的影响 | 第40-42页 |
| 2.4.8 水分含量对Lipozyme IM RM催化非酯型儿茶素酰化反应的影响 | 第42-43页 |
| 2.4.9 有机溶剂中Lipozyme IM RM催化反应操作稳定性的研究 | 第43-44页 |
| 2.4.10 有机溶剂中Lipozyme IM RM促非酯型儿茶素酰化反应放大的研究 | 第44页 |
| 2.5 本章小结 | 第44-46页 |
| 第三章 全细胞促非酯型儿茶素酰化反应的研究 | 第46-66页 |
| 3.1 试验材料 | 第46-47页 |
| 3.1.1 菌种 | 第46-47页 |
| 3.1.2 主要试剂 | 第47页 |
| 3.2 主要仪器设备 | 第47页 |
| 3.3 试验方法 | 第47-51页 |
| 3.3.1 高效液相色谱（HPLC）分析 | 第47页 |
| 3.3.2 菌种培养方法 | 第47-48页 |
| 3.3.3 全细胞催化剂制备方法 | 第48页 |
| 3.3.4 细胞产菌量的计算 | 第48页 |
| 3.3.5 全细胞催化剂的筛选 | 第48-49页 |
| 3.3.6 反应时间对黑曲霉全细胞催化非酯型儿茶素酰化反应的影响 | 第49页 |
| 3.3.7 反应温度对黑曲霉全细胞催化非酯型儿茶素酰化反应的影响 | 第49页 |
| 3.3.8 黑曲霉全细胞用量对非酯型儿茶素酰化反应的影响 | 第49页 |
| 3.3.9 振荡速度对黑曲霉全细胞催化非酯型儿茶素酰化反应的影响 | 第49-50页 |
| 3.3.10 底物摩尔比对黑曲霉全细胞催化非酯型儿茶素酰化反应的影响 | 第50页 |
| 3.3.11 水分含量对黑曲霉全细胞催化非酯型儿茶素酰化反应的影响 | 第50页 |
| 3.3.12 有机溶剂中黑曲霉全细胞催化反应操作稳定性的研究 | 第50页 |
| 3.3.13 有机溶剂中黑曲霉全细胞催化非酯型儿茶素酰化反应放大的研究 | 第50-51页 |
| 3.4 结果与分析 | 第51-64页 |
| 3.4.1 菌种来源及培养条件对全细胞催化非酯型儿茶素酰化反应的影响 | 第51-55页 |
| 3.4.1.1 SM-1 培养基培养对全细胞催化剂的催化效率的影响 | 第51-52页 |
| 3.4.1.2 SM-2 培养基培养对全细胞催化剂的催化效率的影响 | 第52-53页 |
| 3.4.1.3 SM-3 培养基培养对全细胞催化剂的催化效率的影响 | 第53-55页 |
| 3.4.2 黑曲霉全细胞催化非酯型儿茶素酰化反应的反应历程 | 第55页 |
| 3.4.3 反应温度对黑曲霉全细胞催化非酯型儿茶素酰化反应的影响 | 第55-57页 |
| 3.4.4 黑曲霉催化剂的用量对非酯型儿茶素酰化反应的影响 | 第57-58页 |
| 3.4.5 振荡速度对黑曲霉全细胞催化非酯型儿茶素酰化反应的影响 | 第58-60页 |
| 3.4.6 底物摩尔比对黑曲霉全细胞催化非酯型儿茶素酰化反应的影响 | 第60-61页 |
| 3.4.7 水分含量对黑曲霉全细胞催化非酯型儿茶素酰化反应的影响 | 第61-63页 |
| 3.4.8 有机溶剂中黑曲霉全细胞催化操作稳定性的研究 | 第63页 |
| 3.4.9 有机溶剂中黑曲霉全细胞促非酯型儿茶素酰化反应放大的研究 | 第63-64页 |
| 3.5 本章小结 | 第64-66页 |
| 第四章 有机溶剂对黑曲霉的毒性影响 | 第66-76页 |
| 4.1 实验材料 | 第66页 |
| 4.1.1 菌种 | 第66页 |
| 4.1.2 主要试剂 | 第66页 |
| 4.2 主要仪器设备 | 第66-67页 |
| 4.3 实验方法 | 第67-68页 |
| 4.3.1 菌种培养方法 | 第67页 |
| 4.3.2 全细胞催化剂制备方法 | 第67页 |
| 4.3.3 生物量的测量 | 第67页 |
| 4.3.4 有机溶剂对黑曲霉孢子的影响 | 第67页 |
| 4.3.5 有机溶剂对霉菌菌丝球形成的影响 | 第67页 |
| 4.3.6 非酯型儿茶素在不同有机溶剂中溶解度的测定 | 第67-68页 |
| 4.3.7 有机溶剂体系对黑曲霉全细胞催化剂催化活性的影响 | 第68页 |
| 4.4 结果与讨论 | 第68-75页 |
| 4.4.1 有机溶剂对霉菌菌丝球的影响 | 第68-72页 |
| 4.4.1.1 有机溶剂对菌丝球形态的影响 | 第68-70页 |
| 4.4.1.2 有机溶剂对菌丝球质量的影响 | 第70页 |
| 4.4.1.3 有机溶剂对菌丝球催化效率的影响 | 第70-72页 |
| 4.4.2 有机溶剂对黑曲霉孢子形态的影响 | 第72-73页 |
| 4.4.3 有机溶剂体系对全细胞催化剂转化活性的影响 | 第73-75页 |
| 4.5 本章小结 | 第75-76页 |
| 结论与展望 | 第76-79页 |
| 一、主要研究结论 | 第76-78页 |
| 二、创新点 | 第78页 |
| 三、展望 | 第78-79页 |
| 参考文献 | 第79-90页 |
| 攻读硕士学位期间取得的研究成果 | 第90-91页 |
| 致谢 | 第91-92页 |
| 附件 | 第92页 |
