摘要 | 第1-4页 |
Abstract | 第4-9页 |
英文缩写词表 | 第9-10页 |
第一章 文献综述 | 第10-23页 |
1 蓖麻毒素研究概述 | 第10-13页 |
·蓖麻毒素的研究进展 | 第11页 |
·蓖麻毒素的毒性作用 | 第11-13页 |
·蓖麻毒素中毒后的临床表现 | 第13页 |
·蓖麻毒素的检测 | 第13页 |
2 比较蛋白组质学研究的概述 | 第13-20页 |
·蛋白质组学的简介 | 第13-14页 |
·比较蛋白组学的研究意义 | 第14页 |
·比较蛋白质组学的主要分离技术 | 第14-16页 |
·比较蛋白质组学的鉴定技术 | 第16-17页 |
·蛋白质组学的定量技术 | 第17-19页 |
·蛋白质组的生物信息学 | 第19页 |
·比较蛋白质组学的发展前景 | 第19-20页 |
3 细胞模型的概述 | 第20-22页 |
·动物细胞模型的发展现状 | 第20-21页 |
·虚拟细胞模型的建立 | 第21页 |
·细胞模型的毒性作用 | 第21页 |
·细胞模型研究的意义 | 第21-22页 |
4 本文的研究目的和意义 | 第22-23页 |
第二章 蓖麻毒蛋白的提取、纯化及对HuTu-80细胞的毒性作用 | 第23-31页 |
1 材料、试剂与仪器设备 | 第23-24页 |
·主要材料 | 第23页 |
·主要试剂 | 第23页 |
·主要仪器 | 第23-24页 |
2 试验方法 | 第24-27页 |
·蓖麻毒蛋白的提取与纯化 | 第24-25页 |
·蓖麻毒蛋白的浓度测定及SDS-PAGE鉴定 | 第25页 |
·HuTu-80细胞的复苏、培养及冻存 | 第25-26页 |
·MTT法测定蓖麻毒蛋白对HuTu-80细胞的半抑制浓度(IC_(50)) | 第26-27页 |
·观察HuTu-80细胞攻毒后的形态 | 第27页 |
·试验结果的统计学分析 | 第27页 |
3 结果与分析 | 第27-30页 |
·蓖麻毒蛋白的纯化 | 第27-28页 |
·HuTu-80细胞的形态 | 第28页 |
·HuTu-80细胞毒性的测定 | 第28-30页 |
4 小结 | 第30-31页 |
第三章 蓖麻毒蛋白诱导HuTu-80细胞凋亡模型的建立 | 第31-39页 |
1 材料、试剂与仪器设备 | 第31-32页 |
·主要材料 | 第31页 |
·主要试剂 | 第31页 |
·主要仪器 | 第31-32页 |
2 试验方法 | 第32-35页 |
·MTT细胞毒性试验 | 第32页 |
·AO/EB双染色检测细胞凋亡 | 第32页 |
·流式细胞仪检测细胞的凋亡 | 第32-33页 |
·HuTu-80细胞蛋白迁移 | 第33-35页 |
·试验结果的统计学分析 | 第35页 |
3 结果与分析 | 第35-38页 |
·不同处理时间HuTu-80细胞的IC_(50) | 第35页 |
·AO/EB荧光双染色检测细胞凋亡 | 第35-37页 |
·流式细胞仪Annexin Ⅴ-Fitc/PI检测 | 第37-38页 |
·Western-blot分析细胞色素c的易位 | 第38页 |
4 小结 | 第38-39页 |
第四章 蓖麻毒蛋白诱导HuTu-80细胞全蛋白的提取及差异蛋白的获得 | 第39-56页 |
1 材料、试剂与仪器设备 | 第39-40页 |
·主要材料 | 第39页 |
·主要试剂 | 第39页 |
·主要仪器 | 第39-40页 |
2 试验方法 | 第40-46页 |
·细胞培养 | 第40页 |
·蓖麻毒蛋白诱导HuTu-80细胞 | 第40页 |
·HuTu-80细胞全蛋白提取 | 第40-41页 |
·HuTu-80细胞全蛋白浓度测定 | 第41页 |
·蛋白样品的聚丙烯酰胺凝胶电泳(SDS-PAGE) | 第41页 |
·蓖麻毒蛋白诱导HuTu-80细胞全蛋白的iTRAQ标记及质谱分析 | 第41-42页 |
·数据集与实验设计 | 第42-46页 |
3 结果与分析 | 第46-55页 |
·200ng/ml蓖麻毒蛋白处理8h的HuTu-80细胞形态 | 第46-47页 |
·HuTu-80细胞全蛋白浓度测定 | 第47-48页 |
·蛋白质聚丙烯酰胺凝胶电泳 | 第48页 |
·质谱分析结果 | 第48-55页 |
4 小结 | 第55-56页 |
第五章 讨论 | 第56-60页 |
·HuTu-80细胞的筛选 | 第56页 |
·蓖麻毒素诱导HuTu-80细胞凋亡 | 第56-57页 |
·iTRAQ标记技术与差异蛋白质组学的研究 | 第57-60页 |
参考文献 | 第60-66页 |
附录 | 第66-68页 |
致谢 | 第68-69页 |
作者简介 | 第69-70页 |