| 中文摘要 | 第6-9页 |
| 英文摘要 | 第9-11页 |
| 常用缩写词中英文对照表 | 第12-14页 |
| 前言 | 第14-16页 |
| 第一章 HIF3α、BNIP3在神经管畸形中表达的初步分析及验证 | 第16-27页 |
| 1 实验材料 | 第16-17页 |
| 1.1 实验动物 | 第16页 |
| 1.2 实验试剂 | 第16页 |
| 1.3 主要仪器和器材 | 第16-17页 |
| 1.4 试剂配制 | 第17页 |
| 2 实验方法 | 第17-20页 |
| 2.1 动物神经管畸形模型的建立 | 第17-18页 |
| 2.2 转录组测序 | 第18页 |
| 2.3 Real-time PCR验证胚胎脑组织中HIF1a、HIF3a、BNIP3的表达水平 | 第18-20页 |
| 2.4 统计方法 | 第20页 |
| 3 实验结果 | 第20-25页 |
| 3.1 神经管畸形模型的建立 | 第20-21页 |
| 3.2 测序结果 | 第21-22页 |
| 3.3 Real-time PCR验证胚胎脑组织中HIF1a、HIF3a、BNIP3表达情况 | 第22-25页 |
| 4 讨论 | 第25-27页 |
| 第二章 低氧诱导因子HIF3α 通过调控BNIP3引起PC12细胞凋亡 | 第27-53页 |
| 1 实验材料 | 第27-29页 |
| 1.1 实验试剂 | 第27-28页 |
| 1.2 主要仪器和器材 | 第28-29页 |
| 1.3 试剂配制 | 第29页 |
| 2 实验方法 | 第29-36页 |
| 2.1 PC12细胞的培养 | 第29-30页 |
| 2.2 维甲酸干预细胞引起细胞凋亡 | 第30-32页 |
| 2.3 HIF3α、BNIP3随加入维甲酸浓度的增加表达增高 | 第32-34页 |
| 2.4 HIF3αsiRNA细胞转染 | 第34-35页 |
| 2.5 HIF3α siRNA转染细胞后，BNIP3表达水平及细胞凋亡的测定 | 第35-36页 |
| 2.6 统计方法 | 第36页 |
| 3 实验结果 | 第36-50页 |
| 3.1 不同浓度维甲酸干预细胞 | 第36-37页 |
| 3.2 HIF3α、BNIP3在维甲酸干预后的PC12细胞中表达的研究 | 第37-39页 |
| 3.3 维甲酸诱导细胞凋亡 | 第39-40页 |
| 3.4 维甲酸诱导使细胞产生的活性氧含量增高 | 第40-41页 |
| 3.5 维甲酸诱导细胞线粒体膜电位降低 | 第41-43页 |
| 3.6 HIF3αsiRN A细胞转染 | 第43-45页 |
| 3.7 HIF3α 干扰后抑制了BNIP3在PC12细胞中的表达 | 第45-46页 |
| 3.8 HIF3α 干扰后抑制了维甲酸诱导的细胞凋亡 | 第46-48页 |
| 3.9 HIF3α 干扰后抑制了维甲酸对caspase3的活化 | 第48-50页 |
| 3.10 总结 | 第50页 |
| 4 讨论 | 第50-53页 |
| 参考文献 | 第53-57页 |
| 综述 | 第57-69页 |
| 参考文献 | 第63-69页 |
| 致谢 | 第69-70页 |
| 在学期间承担/参与的科研课题与研究成果 | 第70-71页 |
| 个人简历 | 第71页 |
