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鼻腔滴注脂质体Tat-haFGF14-154治疗APP/PS1小鼠阿尔茨海默病及其作用机制研究

摘要第3-5页
ABSTRACT第5页
第一章 前言第11-30页
    1.1 阿尔茨海默病第11-22页
        1.1.1 AD概述第11页
        1.1.2 AD的发病机制第11-19页
            1.1.2.1 发病机制假说第11-16页
            1.1.2.2 Aβ 代谢相关蛋白与AD第16-19页
        1.1.3 AD的治疗现状第19-22页
            1.1.3.1 神经递质替代疗法第19-20页
            1.1.3.2 以Aβ 级联假说为基础的治疗第20-21页
            1.1.3.3 抗炎症和氧化应激为基础的治疗第21-22页
    1.2 酸性成纤维细胞生长因子第22-25页
        1.2.1 aFGF概述第22-23页
        1.2.2 aFGF的功能区与生物学功能第23页
        1.2.3 aFGF的信号通路和作用机制第23-25页
            1.2.3.1 PI3K信号通路第24页
            1.2.3.2 MAPK信号通路第24页
            1.2.3.3 PLCγ 信号通路第24-25页
        1.2.4 aFGF在神经系统疾病中的研究进展第25页
    1.3 提高大分子蛋白药物穿透血脑屏障的方法第25-28页
        1.3.1 Tat-PTD蛋白融合技术第26页
        1.3.2 鼻腔滴注的给药方式第26-27页
        1.3.3 脂质体载体药物递送系统第27-28页
    1.4 课题思路与研究内容第28-29页
        1.4.1 脂质体载体、Tat-PTD蛋白融合、鼻腔滴注联合给药系统及其药效学评价第28-29页
        1.4.2 Tat-haFGF_(14-154) 对AD治疗作用的机制研究第29页
    1.5 技术路线图第29-30页
第二章 鼻腔滴注脂质体Tat-haFGF_(14-154) 对APP/PS1小鼠阿尔茨海默症状的改善作用及初步机制研究第30-66页
    2.1 实验仪器与材料第30-35页
        2.1.1 主要仪器与设备第30-31页
        2.1.2 实验试剂与材料第31-33页
        2.1.3 实验动物第33页
        2.1.4 主要抗体第33-34页
        2.1.5 PCR引物第34页
        2.1.6 主要溶液配制第34-35页
    2.2 实验方法第35-49页
        2.2.1 脂质体Tat-haFGF_(14-154)的制备和条件优化第35-37页
            2.2.1.1 脂质体Tat-haFGF_(14-154)的制备第35页
            2.2.1.2 脂质体Tat-haFGF_(14-154)包封率的测定第35-36页
            2.2.1.3 考马斯亮蓝染色第36-37页
        2.2.2 鼻腔滴注脂质体Tat-haFGF_(14-154)在正常小鼠脑内分布实验第37-39页
            2.2.2.1 实验动物分组及给药第37-38页
            2.2.2.2 动物取材及样本处理第38页
            2.2.2.3 Western blotting检测脂质体Tat-haFGF_(14-154)在小鼠嗅球和额前皮质的分布第38-39页
        2.2.3 鼻腔滴注脂质体Tat-haFGF_(14-154)的药效学评价第39-49页
            2.2.3.1 APP/PS1小鼠的基因鉴定第39-41页
            2.2.3.2 实验动物分组及给药第41-42页
            2.2.3.3 行为学检测第42-45页
            2.2.3.4 动物取材及样本处理第45页
            2.2.3.5 小鼠大脑HE染色第45页
            2.2.3.6 免疫组化检测第45-46页
            2.2.3.7 Western blotting检测第46-47页
            2.2.3.8 酶活检测第47-49页
    2.3 数据分析第49-50页
    2.4 实验结果及分析第50-64页
        2.4.1 脂质体Tat-haFGF_(14-154) 制备条件的优化第50-51页
            2.4.1.1 脂质体Tat-haFGF_(14-154)包封率的检测第50-51页
            2.4.1.2 考马斯亮蓝染色检测脂质体Tat-haFGF_(14-154)的聚集第51页
        2.4.2 鼻腔滴注脂质体Tat-haFGF_(14-154)在正常小鼠嗅球和额前皮质的分布第51-52页
        2.4.3 鼻腔滴注脂质体Tat-haFGF_(14-154) 对APP/PS1小鼠阿尔茨海默症状的改善作用第52-61页
            2.4.3.1 APP/PS1小鼠基因型鉴定第52-53页
            2.4.3.2 小鼠体重变化第53-54页
            2.4.3.3 小鼠大脑HE染色结果第54-55页
            2.4.3.4 认知行为学实验—水迷宫实验第55-56页
            2.4.3.5 非认知行为学实验第56-58页
            2.4.3.6 鼻腔滴注脂质体Tat-haFGF_(14-154) 降低AD小鼠脑内Aβ 沉积第58-60页
            2.4.3.7 鼻腔滴注脂质体Tat-haFGF_(14-154)提高小鼠脑内突触相关蛋白的表达第60-61页
        2.4.4 鼻腔滴注脂质体Tat-haFGF_(14-154) 改善APP/PS1小鼠阿尔茨海默症状的初步作用机制研究第61-64页
            2.4.4.1 Tat-haFGF_(14-154) 对APP剪切相关蛋白的调节作用第61-62页
            2.4.4.2 Tat-haFGF_(14-154) 对ADAM10和BACE1酶活性的调控作用第62-63页
            2.4.4.3 Tat-haFGF_(14-154) 对Aβ 降解蛋白的调节作用第63-64页
    2.5 本章小结第64-66页
第三章 Tat-haFGF_(14-154) 对Aβ_(1-42)损伤的大鼠原代皮质神经元的保护作用及其机制研究第66-97页
    3.1 实验材料与仪器第66-72页
        3.1.1 主要仪器与设备第66-67页
        3.1.2 主要试剂与材料第67-69页
        3.1.3 实验动物第69-70页
        3.1.4 主要抗体第70页
        3.1.5 q-PCR引物第70-71页
        3.1.6 siRNA序列第71页
        3.1.7 抑制剂信息第71页
        3.1.8 主要溶液配制第71-72页
    3.2 实验方法第72-81页
        3.2.1 大鼠原代皮质神经元提取第72-73页
        3.2.2 细胞给药处理及培养第73-74页
        3.2.3 MTT细胞活力检测第74页
        3.2.4 扫描电子显微镜观察细胞表面形态第74-75页
        3.2.5 细胞免疫荧光染色第75-76页
        3.2.6 Western blotting检测蛋白表达第76-78页
        3.2.7 酶活检测第78-79页
        3.2.8 RT-qPCR实验第79-81页
        3.2.9 siRNA干扰实验第81页
    3.3 数据分析第81-82页
    3.4 实验结果第82-95页
        3.4.1 大鼠原代皮质神经元AD细胞模型的建立第82页
        3.4.2 Tat-haFGF_(14-154) 提高Aβ_(1-42)损伤的大鼠原代皮质神经元活力第82-83页
        3.4.3 Tat-haFGF_(14-154) 维持Aβ_(1-42)损伤的大鼠原代皮质神经元结构的完整性第83-84页
        3.4.4 Tat-haFGF_(14-154) 促进原代神经元突触相关蛋白的表达第84-86页
        3.4.5 Tat-haFGF_(14-154) 降低原代神经元内Aβ 的沉积第86页
        3.4.6 Tat-haFGF_(14-154) 对原代神经元Aβ 代谢相关蛋白的调控第86-89页
            3.4.6.1 Tat-haFGF_(14-154) 对原代神经元APP剪切相关蛋白的表达调控第86-87页
            3.4.6.2 Tat-haFGF_(14-154) 对原代神经元ADAM10和BACE1酶活性的调控作用第87-88页
            3.4.6.3 Tat-haFGF_(14-154) 对原代神经元APP剪切产物sAPPα 和sAPPβ 生成的影响第88-89页
            3.4.6.4 Tat-haFGF_(14-154) 对原代神经元Aβ 降解酶的表达调控第89页
        3.4.7 siRNA沉默ADAM10的表达阻断Tat-haFGF_(14-154)对Aβ 损伤神经元的保护作用第89-91页
            3.4.7.1 siRNA干扰降低ADAM10的表达第89-90页
            3.4.7.2 siRNA-ADAM10阻断了Tat-ha FGF14-154的神经保护作用第90-91页
        3.4.8 Tat-haFGF_(14-154) 调控ADAM10表达的信号通路研究第91-94页
            3.4.8.1 体内、外实验证实Tat-haFGF_(14-154)激活XBP1通路第91-93页
            3.4.8.2 体外细胞实验证实Tat-haFGF_(14-154)激活PI3K-CREB-IRE1α/XBP1通路第93-94页
        3.4.9 Tat-haFGF_(14-154) 通过PI3K-CREB-IRE1α/XBP1通路上调ADAM10的表达发挥神经保护作用第94-95页
    3.5 本章小结第95-97页
第四章 讨论第97-104页
    4.1 鼻腔滴注脂质体Tat-haFGF_(14-154)的新型给药方式第97-98页
    4.2 Tat-haFGF_(14-154) 改善APP/PS1小鼠阿尔茨海默症状并拮抗Aβ 引起的原代皮质神经元损伤第98-99页
    4.3 ADAM10介导Tat-haFGF_(14-154) 发挥神经保护作用第99-101页
    4.4 Tat-haFGF_(14-154) 通过激活PI3K-CREB-IRE1α/XBP1通路上调ADAM10的表达发挥神经保护作用第101-104页
第五章 结论与展望第104-106页
    5.1 全文总结第104页
    5.2 创新点第104-105页
    5.3 前景与展望第105-106页
参考文献第106-114页
英文缩略词汇总第114-116页
攻读博士期间科研情况第116-117页
课题资助及基金支持第117-118页
致谢第118-120页

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