摘要 | 第3-5页 |
Abstract | 第5-6页 |
第一章 绪论 | 第10-27页 |
1.1 皮肤修复过程 | 第10-14页 |
1.1.1 皮肤的结构与功能 | 第10-11页 |
1.1.2 皮肤创伤的修复过程 | 第11页 |
1.1.3 巨噬细胞在皮肤修复中的作用 | 第11-14页 |
1.2 皮肤敷料 | 第14-17页 |
1.3 葡聚糖概述 | 第17-22页 |
1.3.1 葡聚糖的结构和性能 | 第17-19页 |
1.3.2 葡聚糖的改性 | 第19-20页 |
1.3.3 葡聚糖的免疫调控机理 | 第20-22页 |
1.4 胶原 | 第22-23页 |
1.4.1 胶原的结构 | 第22页 |
1.4.2 胶原的生物学性能 | 第22-23页 |
1.4.3 胶原的生物医学应用 | 第23页 |
1.5 静电纺丝技术 | 第23-25页 |
1.6 本课题的研究目的、内容与创新点 | 第25-27页 |
1.6.1 研究目的 | 第25页 |
1.6.2 研究内容 | 第25-26页 |
1.6.3 本论文的创新点 | 第26-27页 |
第二章 酯化葡聚糖/胶原纤维膜的制备与性能研究 | 第27-37页 |
2.1 引言 | 第27页 |
2.2 实验材料、试剂与仪器 | 第27-28页 |
2.3 实验步骤 | 第28-29页 |
2.3.1 酯化 β-葡聚糖的制备 | 第28-29页 |
2.3.2 酯化葡聚糖/胶原纤维膜的制备 | 第29页 |
2.4 结构与性能表征 | 第29-31页 |
2.4.1 酯化葡聚糖的红外光谱测试 | 第29页 |
2.4.2 酯化葡聚糖/胶原纤维膜的形貌表征 | 第29-30页 |
2.4.3 酯化葡聚糖/胶原纤维膜的含水率 | 第30页 |
2.4.4 酯化葡聚糖/胶原纤维膜的接触角测试 | 第30页 |
2.4.5 酯化葡聚糖/胶原纤维膜力学性能测试 | 第30页 |
2.4.6 统计学分析 | 第30-31页 |
2.5 结果与讨论 | 第31-36页 |
2.5.0 酯化葡聚糖/胶原纤维膜的制备 | 第31页 |
2.5.1 酯化葡聚糖的结构 | 第31-32页 |
2.5.2 酯化葡聚糖/胶原纤维膜的形貌 | 第32-34页 |
2.5.3 酯化葡聚糖/胶原纤维膜的含水率 | 第34页 |
2.5.4 酯化葡聚糖/胶原纤维膜的亲水性 | 第34-35页 |
2.5.5 酯化葡聚糖/胶原纤维膜的力学性能 | 第35-36页 |
2.6 本章小节 | 第36-37页 |
第三章 酯化葡聚糖/胶原纤维膜的生物活性 | 第37-54页 |
3.1 引言 | 第37-38页 |
3.2 实验材料、试剂与仪器 | 第38-39页 |
3.3 实验方法 | 第39-45页 |
3.3.1 细胞种板前期处理 | 第39-40页 |
3.3.2 细胞增殖测试 | 第40页 |
3.3.3 细胞形态表征 | 第40-41页 |
3.3.4 激光共聚焦显微镜观察 | 第41页 |
3.3.5 培养上清中的NO测定 | 第41-42页 |
3.3.6 荧光定量PCR实验 | 第42-44页 |
3.3.7 RAW264.7 与NIH-3T3共培养 | 第44-45页 |
3.3.8 统计学分析 | 第45页 |
3.4 结果讨论 | 第45-52页 |
3.4.1 细胞增殖 | 第45-46页 |
3.4.2 细胞形态 | 第46-48页 |
3.4.3 NO含量 | 第48-50页 |
3.4.4 细胞因子表达分析 | 第50-51页 |
3.4.5 巨噬细胞分泌因子对成纤维细胞增殖影响 | 第51-52页 |
3.5 本章小结 | 第52-54页 |
第四章 酯化葡聚糖/胶原纤维膜对小鼠皮肤伤口愈合的影响 | 第54-60页 |
4.1 引言 | 第54页 |
4.2 实验试剂和仪器设备 | 第54页 |
4.3 小鼠皮肤全层缺损修复试验 | 第54-56页 |
4.3.1 模型建立 | 第54-55页 |
4.3.2 创伤修复大体观察 | 第55页 |
4.3.3 H&E染色观察 | 第55-56页 |
4.3.4 Masson’s trichrome三色染色 | 第56页 |
4.4 结果与讨论 | 第56-59页 |
4.4.1 小鼠全层皮肤损伤愈合情况 | 第56页 |
4.4.2 组织学观察(H&E染色) | 第56-57页 |
4.4.3 组织学观察(Masson’s trichrome染色) | 第57-59页 |
4.5 本章小结 | 第59-60页 |
第五章 全文总结 | 第60-61页 |
参考文献 | 第61-69页 |
致谢 | 第69页 |