摘要 | 第5-6页 |
ABSTRACT | 第6页 |
第一章 文献综述 | 第10-17页 |
1.1 非生物胁迫制约玉米产量与品质 | 第10页 |
1.2 棉子糖代谢通路在玉米抗逆中的作用 | 第10-11页 |
1.3 肌醇半乳糖合成酶(GolS)研究进展 | 第11-12页 |
1.4 bZIP类转录因子简介 | 第12-14页 |
1.4.1 bZIP转录因子的结构特点 | 第12页 |
1.4.2 拟南芥bZIP转录因子研究进展 | 第12-13页 |
1.4.3 玉米bZIP转录因子研究进展 | 第13-14页 |
1.5 MAPK信号通路简介 | 第14-16页 |
1.5.1 MAPK级联途径的组成和分类 | 第14-15页 |
1.5.2 MAPK级联途径参与非生物逆境胁迫 | 第15页 |
1.5.3 MAPK级联反应在ABA信号通路中的作用 | 第15-16页 |
1.6 研究目的和意义 | 第16-17页 |
1.6.1 研究目的 | 第16页 |
1.6.2 研究意义 | 第16-17页 |
第二章 材料和方法 | 第17-27页 |
2.1 实验材料 | 第17-18页 |
2.1.1 植物材料 | 第17页 |
2.1.2 菌株和载体 | 第17页 |
2.1.3 主要试剂 | 第17-18页 |
2.2 实验方法 | 第18-27页 |
2.2.1 植物生长条件 | 第18页 |
2.2.2 RNA提取及实时定量PCR | 第18-19页 |
2.2.3 基因扩增及载体构建 | 第19-20页 |
2.2.4 启动子带GUS报告基因的表达分析 | 第20页 |
2.2.5 荧光显微镜观察亚细胞定位 | 第20-21页 |
2.2.6 玉米叶肉原生质体制备与转化 | 第21-22页 |
2.2.7 双荧光报告系统测定荧光值 | 第22页 |
2.2.8 原核表达与蛋白纯化 | 第22页 |
2.2.9 多克隆抗体制备 | 第22-23页 |
2.2.10 凝胶迁移滞后电泳(EMSA) | 第23-24页 |
2.2.11 萤火虫荧光素酶双分子荧光互补(SFLC) | 第24页 |
2.2.12 体外去磷酸化实验与Western Blot | 第24-25页 |
2.2.13 拟南芥侵染与干旱处理 | 第25页 |
2.2.14 拟南芥叶片相对电导率测定 | 第25-27页 |
第三章 实验结果与分析 | 第27-45页 |
3.1 ZmbZIP16的系统进化树分析 | 第27-28页 |
3.2 ZmGols2启动子上G-box元件分析 | 第28-29页 |
3.3 ZmbZIP16响应脱水胁迫 | 第29-31页 |
3.4 ZmbZIP16启动子分析及GUS染色 | 第31-32页 |
3.5 ZmbZIP16的亚细胞定位 | 第32-33页 |
3.6 ZmbZIP16的克隆,原核表达及蛋白纯化 | 第33-34页 |
3.7 凝胶迁移滞后电泳实验(EMSA) | 第34-35页 |
3.8 双荧光报告系统证明ZmbZIP16下调ZmGols2 | 第35-37页 |
3.8.1 ZmbZIP16对全长ZmGols2启动子具有下调作用 | 第35-36页 |
3.8.2 ZmbZIP16间接调控ZmGols2 | 第36-37页 |
3.9 ZmbZIP16存在潜在的磷酸化位点 | 第37-40页 |
3.9.1 ZmbZIP16可在外施ABA的条件下被磷酸化 | 第37-38页 |
3.9.2 ZmbZIP16蛋白磷酸化位点预测 | 第38-39页 |
3.9.3 点突变鉴定ZmbZIP16磷酸化位点 | 第39-40页 |
3.10 玉米MAPK基因家族成员的扩增 | 第40页 |
3.11 玉米MAPK家族成员与ZmbZIP16的蛋白互作模式检测 | 第40-42页 |
3.12 超表达ZmbZIP16拟南芥抗旱性分析 | 第42-45页 |
3.12.1 超表达Zmb ZIP16的拟南芥植株鉴定 | 第42页 |
3.12.2 超表达Zmb ZIP16拟南芥植株对干旱胁迫的耐受分析 | 第42-45页 |
第四章 讨论 | 第45-47页 |
4.1 ZmbZIP16对下游基因的调控 | 第45页 |
4.2 ZmbZIP16的磷酸化与SFLC系统 | 第45-47页 |
参考文献 | 第47-54页 |
附录 | 第54-61页 |
缩略表 | 第61-62页 |
致谢 | 第62-63页 |
作者简介 | 第63页 |