| 学位论文数据集 | 第3-4页 |
| 摘要 | 第4-8页 |
| ABSTRACT | 第8-11页 |
| 符号说明 | 第20-21页 |
| 第一章 绪论 | 第21-55页 |
| 1.1 基因治疗简介 | 第21-22页 |
| 1.2 基因传递系统 | 第22-50页 |
| 1.2.1 病毒载体 | 第24页 |
| 1.2.2 非病毒载体 | 第24-40页 |
| 1.2.2.1 脂质体 | 第25-26页 |
| 1.2.2.2 聚合物载体 | 第26-33页 |
| 1.2.2.3 无机纳米基因载体 | 第33-40页 |
| 1.2.3 非病毒基因载体在基因传递过程中的屏障和解决策略 | 第40-50页 |
| 1.2.3.1 基因传递过程中的屏障 | 第40-41页 |
| 1.2.3.2 克服基因传递过程中屏障的策略 | 第41-50页 |
| 1.3 活性/可控自由基聚合在生物医用材料领域的应用 | 第50-53页 |
| 1.3.1 原子转移自由基聚合(ATRP) | 第51页 |
| 1.3.2 可逆加成-断裂链转移(RAFT)可控自由基聚合 | 第51-52页 |
| 1.3.3 氮氧自由基活性聚合(NMRP) | 第52-53页 |
| 1.4 课题的目的及意义 | 第53-55页 |
| 第二章 基于PDMAEMA修饰的片层状水滑石纳米颗粒构建高性能基因载体 | 第55-75页 |
| 2.1 前言 | 第55-57页 |
| 2.2 实验部分 | 第57-62页 |
| 2.2.1 实验试剂 | 第57-58页 |
| 2.2.2 实验仪器 | 第58页 |
| 2.2.3 载体的制备 | 第58-59页 |
| 2.2.3.1 水滑石纳米颗粒(LDH)表面引入ATRP引发位点 | 第58-59页 |
| 2.2.3.2 LDH表面修饰阳离子聚合物链PDMAEMA | 第59页 |
| 2.2.4 LDH-PD纳米载体的表征 | 第59页 |
| 2.2.5 LDH-PD/pDNA复合体的表征 | 第59-60页 |
| 2.2.6 细胞毒性测试 | 第60-61页 |
| 2.2.7 体外转染测试 | 第61页 |
| 2.2.8 细胞对LDH-PD/pDNA复合体内吞效率的测试 | 第61页 |
| 2.2.9 统计分析 | 第61-62页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第62-74页 |
| 2.3.1 载体的制备及表征 | 第62-66页 |
| 2.3.2 LDH-PD/pDNA复合体的表征 | 第66-69页 |
| 2.3.3 细胞毒性分析 | 第69-70页 |
| 2.3.4 体外转染能力分析 | 第70-73页 |
| 2.3.5 细胞内吞效率分析 | 第73-74页 |
| 2.4 小结 | 第74-75页 |
| 第三章 基于PDMAEMA修饰的针状纳米纤维素构建高性能基因载体 | 第75-101页 |
| 3.1 前言 | 第75-76页 |
| 3.2 实验部分 | 第76-83页 |
| 3.2.1 实验试剂 | 第76-77页 |
| 3.2.2 实验仪器 | 第77页 |
| 3.2.3 载体的制备 | 第77-78页 |
| 3.2.3.1 纤维素纳米颗粒的制备 | 第77页 |
| 3.2.3.2 CNC表面引入ATRP引发位点 | 第77-78页 |
| 3.2.3.3 CNC表面修饰PDMAEMA链 | 第78页 |
| 3.2.4 CNC基纳米载体的表征 | 第78页 |
| 3.2.5 载体/pDNA复合体的特性表征 | 第78-80页 |
| 3.2.5.1 琼脂糖凝胶电泳测试 | 第79页 |
| 3.2.5.2 复合体的粒径及电位测试 | 第79-80页 |
| 3.2.6. 细胞吞噬效率测试 | 第80页 |
| 3.2.7 细胞毒性测试 | 第80页 |
| 3.2.8 体外转染测试 | 第80-81页 |
| 3.2.9 体外抗癌细胞测试 | 第81-82页 |
| 3.2.10 动物体内抗肿瘤测试 | 第82页 |
| 3.2.11 统计分析 | 第82-83页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第83-100页 |
| 3.3.1 CNC-SS-PDs载体的制备和表征 | 第83-88页 |
| 3.3.2 CNC-SS-PDs/pDNA复合体的表征 | 第88-90页 |
| 3.3.3 细胞毒性分析 | 第90-91页 |
| 3.3.4 细胞内吞效率分析 | 第91-92页 |
| 3.3.5 体外转染能力分析 | 第92-95页 |
| 3.3.6 体外抗肿瘤细胞测试 | 第95-98页 |
| 3.3.7 体内抗肿瘤测试 | 第98-100页 |
| 3.4 小结 | 第100-101页 |
| 第四章 基于不同可控聚合方法构建纳米纤维素基多功能基因载体 | 第101-129页 |
| 4.1 前言 | 第101-102页 |
| 4.2 实验部分 | 第102-108页 |
| 4.2.1 实验试剂 | 第102-103页 |
| 4.2.2 实验仪器 | 第103页 |
| 4.2.3 载体的制备 | 第103-105页 |
| 4.2.3.1 双功能引发剂的制备 | 第103-104页 |
| 4.2.3.2 CNC表面修饰PPEGEEMA和PDMAEMA链 | 第104-105页 |
| 4.2.3.3 CNC-g-PPEG/PDMA表面固定Au NPs | 第105页 |
| 4.2.4 多功能基因载体的表征 | 第105页 |
| 4.2.5 载体/pDNA复合体的特性表征 | 第105-106页 |
| 4.2.5.1 琼脂糖凝胶电泳测试 | 第105-106页 |
| 4.2.5.2 复合体的粒径及电位测试 | 第106页 |
| 4.2.6 CT造影测试 | 第106页 |
| 4.2.7 细胞毒性测试 | 第106-107页 |
| 4.2.8 体外转染测试 | 第107页 |
| 4.2.9 细胞吞噬效率测试 | 第107页 |
| 4.2.10 统计分析 | 第107-108页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第108-127页 |
| 4.3.1 双功能引发剂的制备与表征 | 第108-111页 |
| 4.3.2 CNC表面修饰PPEGEEMA和PDMAEMA聚合物链 | 第111-115页 |
| 4.3.3 CNC-g-PPEG/PDMA表面固定Au NPs | 第115-118页 |
| 4.3.4 体外CT造影分析 | 第118页 |
| 4.3.5 载体/pDNA复合体的表征 | 第118-120页 |
| 4.3.6 细胞毒性分析 | 第120-122页 |
| 4.3.7 体外转染能力分析 | 第122-126页 |
| 4.3.8 细胞内吞效率分析 | 第126-127页 |
| 4.4 小结 | 第127-129页 |
| 第五章 结论 | 第129-131页 |
| 参考文献 | 第131-147页 |
| 致谢 | 第147-149页 |
| 研究成果及发表的学术论文 | 第149-151页 |
| 作者简介 | 第151-153页 |
| 导师简介1 | 第153-155页 |
| 导师简介2 | 第155-156页 |
| 博士研究生学位论文答辩委员会决议书 | 第156-157页 |
