| 摘要 | 第3-7页 |
| ABSTRACT | 第7-11页 |
| 第1章 引言 | 第19-30页 |
| 1.1 卵巢生殖干细胞的发现挑战了垄断生殖医学界近一百年的“卵泡池固定理论” | 第19-23页 |
| 1.1.1 卵泡池固定理论 | 第19-20页 |
| 1.1.2 卵子再生理论 | 第20页 |
| 1.1.3 卵巢生殖干细胞的发现 | 第20-21页 |
| 1.1.4 OGSCS的来源—卵巢表面上皮层 | 第21-22页 |
| 1.1.5 OGSCS的特性 | 第22-23页 |
| 1.2 卵巢生殖干细胞（OGSCS）的衰老可能是卵巢衰老的根本原因 | 第23-26页 |
| 1.2.1 成体干细胞衰老及机制 | 第23-24页 |
| 1.2.2 OGSCS的衰老 | 第24-25页 |
| 1.2.3 延缓OGSCs衰老 | 第25-26页 |
| 1.3 HIPPO信号通路在雌性生殖系统中的研究 | 第26-30页 |
| 1.3.1 HIPPO信号通路 | 第26-27页 |
| 1.3.2 HIPPO信号通路与乳腺发育 | 第27-28页 |
| 1.3.3 HIPPO信号通路与卵巢发育 | 第28-29页 |
| 1.3.4 HIPPO信号通路通过调节OGSCS的功能可能在延缓卵巢衰老中起重要的作用 | 第29-30页 |
| 第2章 HIPPO信号通路主要分子在生理性衰老和病理性衰老卵巢生殖上皮细胞中的表达及动态变化 | 第30-56页 |
| 2.1 引言 | 第30页 |
| 2.2 材料与试剂 | 第30-34页 |
| 2.2.1 实验动物 | 第30页 |
| 2.2.2 病理性卵巢衰老模型 | 第30-31页 |
| 2.2.3 人卵巢组织 | 第31页 |
| 2.2.4 主要试剂 | 第31-33页 |
| 2.2.5 主要仪器 | 第33页 |
| 2.2.6 溶液配制 | 第33-34页 |
| 2.3 实验方法 | 第34-40页 |
| 2.3.1 卵巢的石蜡切片 | 第34页 |
| 2.3.2 卵巢的HE染色 | 第34-35页 |
| 2.3.3 卵巢切片免疫组化的表达比较 | 第35-36页 |
| 2.3.4 卵巢切片免疫荧光双标记 | 第36页 |
| 2.3.5 荧光定量PCR | 第36-38页 |
| 2.3.6 Western blot | 第38-40页 |
| 2.3.7 统计学分析 | 第40页 |
| 2.4 结果与分析 | 第40-52页 |
| 2.4.1 HIPPO信号通路主要分子在生理性衰老小鼠卵巢OSE细胞中的表达及动态变化 | 第40-44页 |
| 2.4.2 HIPPO信号通路主要分子在病理性衰老小鼠卵巢OSE细胞中的表达及动态变化 | 第44-49页 |
| 2.4.3 HIPPO信号通路主要分子在生理性衰老人卵巢OSE细胞中的表达及动态变化 | 第49-52页 |
| 2.5 讨论 | 第52-56页 |
| 第3章 HIPPO信号通路在卵巢生殖干细胞增殖和分化中的作用 | 第56-72页 |
| 3.1 引言 | 第56页 |
| 3.2 实验材料 | 第56-58页 |
| 3.2.1 实验动物 | 第56页 |
| 3.2.2 主要试剂 | 第56-58页 |
| 3.2.3 主要仪器 | 第58页 |
| 3.3 实验方法 | 第58-64页 |
| 3.3.1 小鼠OGSCs的分离与培养 | 第58-61页 |
| 3.3.2 小鼠OGSCs的鉴定 | 第61-64页 |
| 3.3.3 慢病毒载体介导YAP基因体外转染细胞 | 第64页 |
| 3.3.4 统计学分析 | 第64页 |
| 3.4 结果 | 第64-70页 |
| 3.4.1 OGSCS的分离与鉴定 | 第64-66页 |
| 3.4.2 HIPPO信号通路在OGSCS中的定位表达 | 第66-67页 |
| 3.4.3 慢病毒介导YAP1过表达载体体外转染OGSCs及其增殖变化 | 第67-69页 |
| 3.4.4 慢病毒介导YAP1干扰载体体外转染OGSCs及其增殖变化 | 第69-70页 |
| 3.5 讨论 | 第70-72页 |
| 第4章 HIPPO信号通路通过调控卵巢生殖干细胞的功能在卵巢功能重塑中的作用初探 | 第72-87页 |
| 4.1 引言 | 第72页 |
| 4.2 实验材料 | 第72-73页 |
| 4.2.1 实验动物模型 | 第72-73页 |
| 4.2.2 主要试剂 | 第73页 |
| 4.2.3 主要仪器 | 第73页 |
| 4.2.4 溶液配制 | 第73页 |
| 4.3 实验方法 | 第73-76页 |
| 4.3.1 新生乳鼠卵巢体外培养 | 第73-74页 |
| 4.3.2 慢病毒介导YAP1载体体外转染乳鼠卵巢 | 第74页 |
| 4.3.3 慢病毒介导YAP1载体体外转染成年小鼠卵巢 | 第74-75页 |
| 4.3.4 慢病毒转染分组 | 第75页 |
| 4.3.5 标本采集 | 第75页 |
| 4.3.6 卵巢的石蜡切片 | 第75页 |
| 4.3.7 卵巢中HE染色 | 第75页 |
| 4.3.8 卵巢中免疫组化的表达比较 | 第75页 |
| 4.3.9 卵巢中免疫荧光双标记 | 第75页 |
| 4.3.10 Western blot | 第75页 |
| 4.3.11 血清中雌二醇、卵泡刺激素测定 | 第75-76页 |
| 4.3.12 统计学分析 | 第76页 |
| 4.4 结果 | 第76-85页 |
| 4.4.1 慢病毒介导YAP1表达载体对新生乳鼠卵巢中卵泡发育的影响 | 第76页 |
| 4.4.2 慢病毒介导YAP1过表达载体对小鼠卵巢功能恢复作用研究 | 第76-81页 |
| 4.4.3 慢病毒介导YAP1干扰载体对小鼠卵巢功能损伤作用研究 | 第81-85页 |
| 4.5 讨论 | 第85-87页 |
| 第5章 结论与展望 | 第87-88页 |
| 5.1 结论 | 第87页 |
| 5.2 下一步工作 | 第87-88页 |
| 致谢 | 第88-90页 |
| 参考文献 | 第90-97页 |
| 攻读学位期间的研究成果 | 第97-99页 |
| 综述一 | 第99-110页 |
| 参考文献 | 第107-110页 |
| 综述二 | 第110-120页 |
| 参考文献 | 第117-120页 |
