| 摘要 | 第3-6页 |
| ABSTRACT | 第6-8页 |
| 前言 | 第12-18页 |
| 第一章 胰高血糖素样肽-1改善过氧化氢诱导血管内皮氧化损伤的研究 | 第18-45页 |
| 1.1 实验材料 | 第18-24页 |
| 1.1.1 实验细胞 | 第18-19页 |
| 1.1.2 主要实验试剂 | 第19-20页 |
| 1.1.3 主要实验器材 | 第20-21页 |
| 1.1.4 主要试剂的配置 | 第21-24页 |
| 1.2 实验方法 | 第24-31页 |
| 1.2.1 细胞培养 | 第24页 |
| 1.2.2 细胞消化传代 | 第24页 |
| 1.2.3 细胞冻存 | 第24-25页 |
| 1.2.4 细胞骨架F-actin染色分析 | 第25页 |
| 1.2.5 细胞内活性氧簇(ROS)水平检测 | 第25-26页 |
| 1.2.6 流式细胞术检测细胞凋亡 | 第26-27页 |
| 1.2.7 Western blot分析 | 第27-28页 |
| 1.2.8 实时定量PCR | 第28-30页 |
| 1.2.9 免疫荧光 | 第30-31页 |
| 1.2.10 统计学分析 | 第31页 |
| 1.3 实验结果 | 第31-40页 |
| 1.3.1 GLP-1降低H_2O_2诱导的HUVEC细胞骨架损伤 | 第31-32页 |
| 1.3.2 GLP-1抑制氧化应激下ROS的产生 | 第32-33页 |
| 1.3.3 GLP-1抑制H_2O_2诱导的HUVEC细胞凋亡 | 第33-35页 |
| 1.3.4 GLP-1逆转H_2O_2诱导的mTOR活性抑制 | 第35页 |
| 1.3.5 GLP-1促进抗氧化基因表达 | 第35-36页 |
| 1.3.6 GLP-1促进抗氧化蛋白CAT、GPX1的表达 | 第36-40页 |
| 1.4 讨论 | 第40-43页 |
| 1.5 小结 | 第43-45页 |
| 第二章 胰高血糖素样肽-1抑制PANC-1细胞的迁移 | 第45-63页 |
| 2.1 实验材料 | 第45-48页 |
| 2.1.1 实验细胞 | 第45页 |
| 2.1.2 主要实验试剂 | 第45-46页 |
| 2.1.3 主要实验器材 | 第46-47页 |
| 2.1.4 主要试剂的配置 | 第47-48页 |
| 2.2 实验方法 | 第48-54页 |
| 2.2.1 细胞培养 | 第48页 |
| 2.2.2 细胞消化传代 | 第48页 |
| 2.2.3 细胞冻存 | 第48页 |
| 2.2.4 PANC-1细胞铺板 | 第48-49页 |
| 2.2.5 CCK8实验 | 第49页 |
| 2.2.6 细胞划痕实验 | 第49-50页 |
| 2.2.7 Transwell 迁移 | 第50-51页 |
| 2.2.8 Giemsa染色 | 第51页 |
| 2.2.9 Hoechst染色 | 第51-52页 |
| 2.2.10 实时定量PCR | 第52-54页 |
| 2.2.11 统计学分析 | 第54页 |
| 2.3 实验结果 | 第54-60页 |
| 2.3.1 不同浓度的GLP-1对胰腺癌PANC-1细胞增殖的影响 | 第54-55页 |
| 2.3.2 GLP-1抑制胰腺癌PANC-1细胞的迁移 | 第55-58页 |
| 2.3.3 GLP-1促进E-cadherin基因表达,抑制N-cadherin基因表达 | 第58-60页 |
| 2.4 讨论 | 第60-62页 |
| 2.5 小结 | 第62-63页 |
| 参考文献 | 第63-72页 |
| 中英文缩略词表 | 第72-73页 |
| 攻读硕士期间成果 | 第73-74页 |
| 致谢 | 第74-75页 |
