| 中文摘要 | 第14-17页 |
| Abstract | 第17-20页 |
| 符号说明 | 第21-24页 |
| 第一章 前言 | 第24-31页 |
| 1. SOD概述 | 第24-26页 |
| 1.1 活性氧自由基与疾病 | 第24-25页 |
| 1.2 超氧化物歧化酶的潜在治疗作用 | 第25页 |
| 1.3 超氧化物歧化酶的多糖化学修饰 | 第25-26页 |
| 2. 肠炎 | 第26-30页 |
| 2.1 炎症性肠道疾病概述 | 第26页 |
| 2.2 肠炎与氧化应激 | 第26-27页 |
| 2.3 肠炎与细胞因子 | 第27-28页 |
| 2.4 肠炎的治疗进展 | 第28页 |
| 2.5 肠炎模型的建立 | 第28-30页 |
| 2.5.1 TBNS方法 | 第28-29页 |
| 2.5.2 乙酸法 | 第29页 |
| 2.5.3 DSS法 | 第29页 |
| 2.5.4 基因敲除 | 第29-30页 |
| 3. 本课题研究的目的和意义 | 第30-31页 |
| 3.1 前期研究基础 | 第30页 |
| 3.2 本课题拟解决的关键问题 | 第30-31页 |
| 第二章 O-HTCC-SOD的制备、纯化和性质分析 | 第31-44页 |
| 1. 实验材料 | 第31-32页 |
| 1.1 仪器 | 第31页 |
| 1.2 试剂 | 第31-32页 |
| 1.3 配制液体 | 第32页 |
| 2. 实验方法 | 第32-37页 |
| 2.1 O-HTCC-SOD的制备及分析 | 第32-34页 |
| 2.1.1 水溶性壳聚糖O-HTCC的制备 | 第32-33页 |
| 2.1.2 O-HTCC的性质分析 | 第33-34页 |
| 2.2 O-HTCC-SOD的合成、纯化与表征 | 第34-36页 |
| 2.2.1 O-HTCC-SOD的合成 | 第34-35页 |
| 2.2.2 O-HTCC-SOD的纯化及分析 | 第35页 |
| 2.2.3 O-HTCC-SOD酶活测定 | 第35-36页 |
| 2.2.4 O-HTCC-SOD的酶比活力测定 | 第36页 |
| 2.3 O-HTCC-SOD的稳定性评价 | 第36页 |
| 2.4 数据处理 | 第36-37页 |
| 3. 实验结果与分析 | 第37-41页 |
| 3.1 O-HTCC的性质分析 | 第37-38页 |
| 3.2 O-HTCC的自由氨基率测定 | 第38-39页 |
| 3.3 O-HTCC-SOD制备和纯化 | 第39-41页 |
| 3.4 O-HTCC-SOD的酶比活力测定 | 第41页 |
| 3.5 O-HTCC-SOD的稳定性 | 第41页 |
| 4. 讨论 | 第41-43页 |
| 4.1 壳聚糖的衍生物 | 第41-42页 |
| 4.2 SOD酶的糖修饰 | 第42-43页 |
| 5. 本章小结 | 第43-44页 |
| 第三章 O-HTCC-SOD体外抗炎活性评价 | 第44-54页 |
| 1. 实验材料 | 第44-45页 |
| 1.1 仪器 | 第44页 |
| 1.2 实验试剂 | 第44-45页 |
| 1.3 动物 | 第45页 |
| 2. 实验方法 | 第45-48页 |
| 2.1 小鼠腹腔巨噬细胞分离及培养 | 第45页 |
| 2.2 细胞毒性实验 | 第45-46页 |
| 2.3 O-HTCC-SOD对炎症因子分泌的影响 | 第46-47页 |
| 2.3.1 分组 | 第46页 |
| 2.3.2 ELISA试剂盒测定炎症因子 | 第46-47页 |
| 2.4 O-HTCC-SOD对胞内ROS水平的影响 | 第47页 |
| 2.5 数据处理 | 第47-48页 |
| 3. 实验结果与分析 | 第48-52页 |
| 3.1 O-HTCC-SOD的细胞毒性试验 | 第48页 |
| 3.2 O-HTCC-SOD对巨噬细胞炎症因子产量的影响 | 第48-51页 |
| 3.2.1 TNF-α的变化 | 第48-49页 |
| 3.2.2 IL-6的变化 | 第49-50页 |
| 3.2.3 IL-1β的变化 | 第50-51页 |
| 3.3 胞内超氧阴离子的变化 | 第51-52页 |
| 4. 讨论 | 第52-53页 |
| 4.1 O-HTCC-SOD的细胞毒性 | 第52-53页 |
| 4.2 O-HTCC-SOD对LPS诱导的炎症细胞模型的作用 | 第53页 |
| 4.3 O-HTCC-SOD对LPS诱导的胞内氧化应激反应的抑制作用 | 第53页 |
| 5. 本章小结 | 第53-54页 |
| 第四章 O-HTCC-SOD治疗结肠炎的体内研究 | 第54-68页 |
| 1. 实验材料 | 第54-55页 |
| 1.1 仪器 | 第54页 |
| 1.2 实验试剂 | 第54-55页 |
| 1.3 动物 | 第55页 |
| 2. 实验方法 | 第55-57页 |
| 2.1 小鼠急性结肠炎模型建立 | 第55页 |
| 2.2 动物分组与给药方式 | 第55页 |
| 2.3 DAI评分 | 第55-56页 |
| 2.4 结肠长度 | 第56页 |
| 2.5 结肠组织MPO水平 | 第56-57页 |
| 2.5.1 测定原理 | 第56-57页 |
| 2.5.2 操作步骤 | 第57页 |
| 2.6 结肠组织病理学分析 | 第57页 |
| 2.7 O-HTCC-SOD治疗急性结肠炎的量效关系 | 第57页 |
| 2.8 数据处理 | 第57页 |
| 3. 实验结果与分析 | 第57-65页 |
| 3.1 O-HTCC-SOD缓解DSS诱导的体重减轻 | 第57-58页 |
| 3.2 O-HTCC-SOD缓解DSS诱导的DAI升高 | 第58-59页 |
| 3.3 O-HTCC-SOD减轻DSS导致的结肠长度缩短 | 第59-60页 |
| 3.4 O-HTCC-SOD降低DSS诱导的MPO活性升高 | 第60-61页 |
| 3.5 O-HTCC-SOD抑制小鼠结肠组织病理学改变 | 第61-62页 |
| 3.6 O-HTCC-SOD治疗急性结肠炎的量效关系 | 第62-65页 |
| 3.6.1 体重减轻 | 第62-63页 |
| 3.6.2 DAI评分 | 第63-64页 |
| 3.6.3 结肠长度 | 第64页 |
| 3.6.4 MPO活性水平 | 第64-65页 |
| 4. 讨论 | 第65-67页 |
| 4.1 DSS造模预实验探索 | 第65-66页 |
| 4.2 O-HTCC-SOD对急性结肠炎小鼠的治疗作用 | 第66页 |
| 4.3 不同浓度的O-HTCC-SOD对急性结肠炎小鼠的治疗作用 | 第66-67页 |
| 5. 本章小结 | 第67-68页 |
| 第五章 O-HTCC-SOD的免疫原性初步研究 | 第68-72页 |
| 1. 实验材料 | 第68-69页 |
| 1.1 仪器 | 第68页 |
| 1.2 实验试剂 | 第68页 |
| 1.3 动物 | 第68-69页 |
| 2. 实验方法 | 第69页 |
| 2.1 动物分组及给药方式 | 第69页 |
| 2.2 数据处理 | 第69页 |
| 3. 实验结果与分析 | 第69-70页 |
| 4. 讨论 | 第70-71页 |
| 4.1 蛋白类药物的免疫原性 | 第70页 |
| 4.2 佐剂的选择 | 第70-71页 |
| 5. 本章小结 | 第71-72页 |
| 第六章 总结与展望 | 第72-74页 |
| 参考文献 | 第74-86页 |
| 致谢 | 第86-87页 |
| 攻读硕士学位期间学术成果 | 第87-88页 |
| 学位论文评阅及答辩情况表 | 第88页 |
