| 摘要 | 第1-7页 |
| ABSTRACT | 第7-10页 |
| 目录 | 第10-13页 |
| 缩略词表 | 第13-14页 |
| 第1章 文献综述 | 第14-28页 |
| ·水稻白叶枯病 | 第14-17页 |
| ·分布与危害 | 第14-15页 |
| ·致病菌株 | 第15页 |
| ·抗病基因 | 第15-17页 |
| ·水稻突变体库 | 第17-21页 |
| ·水稻突变体库的构建方法 | 第17-19页 |
| ·目前主要的水稻突变体库资源 | 第19-21页 |
| ·突变体中基因多态性及检测技术 | 第21-22页 |
| ·突变体中基因多态性 | 第21-22页 |
| ·基因多态检测技术 | 第22页 |
| ·高分辨率溶解曲线技术(HRM) | 第22-26页 |
| ·高分辨率溶解曲线原理 | 第23页 |
| ·高分辨率溶解曲线分析过程 | 第23-24页 |
| ·高分辨率溶解曲线技术特点 | 第24页 |
| ·高分辨率溶解曲线应用领域 | 第24-26页 |
| ·本研究的目的及意义 | 第26-28页 |
| 第2章 水稻T-DNA突变体库的筛选 | 第28-35页 |
| ·前言 | 第28页 |
| ·材料与方法 | 第28-30页 |
| ·材料 | 第28-29页 |
| ·水稻突变体库材料 | 第28页 |
| ·白叶枯病菌株 | 第28页 |
| ·所用试剂 | 第28页 |
| ·仪器设备 | 第28-29页 |
| ·方法 | 第29-30页 |
| ·水稻发芽 | 第29页 |
| ·水稻水培培养液配制 | 第29页 |
| ·白叶枯病菌株培养基配制 | 第29-30页 |
| ·白叶枯病菌株复壮及培养 | 第30页 |
| ·接种及表型观察 | 第30页 |
| ·实验结果 | 第30-33页 |
| ·白叶枯病抗性突变体 | 第30-31页 |
| ·类病变突变体 | 第31页 |
| ·其他突变体 | 第31-33页 |
| ·分析与讨论 | 第33-35页 |
| ·白叶枯病抗性突变体筛选菌株的选择 | 第33页 |
| ·白叶枯病抗性突变体筛选 | 第33-34页 |
| ·突变体库中其他突变表型 | 第34-35页 |
| 第3章 水稻白叶枯病抗性突变体BBM14和BBM66生理生化分析 | 第35-49页 |
| ·前言 | 第35页 |
| ·材料与方法 | 第35-39页 |
| ·材料 | 第35页 |
| ·突变体材料 | 第35页 |
| ·试剂 | 第35页 |
| ·仪器设备 | 第35页 |
| ·方法 | 第35-39页 |
| ·水稻材料的发芽 | 第35-36页 |
| ·抗谱分析所用菌株及近等基因系 | 第36页 |
| ·DNA的提取 | 第36页 |
| ·白叶枯病菌株生长曲线分析 | 第36-37页 |
| ·水稻总RNA的提取 | 第37页 |
| ·第一链cDNA的合成 | 第37-38页 |
| ·定量PCR分析 | 第38页 |
| ·T-DNA检测用的引物设计 | 第38页 |
| ·病斑数据统计软件 | 第38-39页 |
| ·实验结果 | 第39-47页 |
| ·BBM14株系M_0代对P10菌株的抗性 | 第39页 |
| ·BBM14株系M_1群体抗病性及T-DNA检测 | 第39-41页 |
| ·BBM66株系M_0代对P10菌株抗性 | 第41页 |
| ·BBM66株系M_1群体抗病性及T-DNA检测 | 第41-42页 |
| ·BBM14和BBM66接种P10后叶片内菌株生长曲线 | 第42-43页 |
| ·BBM14和BBM66抗谱及与已知抗性基因的比较 | 第43-46页 |
| ·BBM14和BBM66抗谱分析 | 第43-44页 |
| ·BBM14与BBM66抗谱与已知抗性基因抗谱比较 | 第44-46页 |
| ·BBM14和BBM66中部分防卫基因表达分析 | 第46-47页 |
| ·分析与讨论 | 第47-49页 |
| ·BBM14与BBM66白叶枯病抗性确认及与T-DNA协同性分析 | 第47页 |
| ·BBM14与BBM66的抗谱 | 第47-48页 |
| ·BBM14和BBM66的抗病机理研究 | 第48-49页 |
| 第4章 高分辨率溶解曲线在水稻基因分型中的应用 | 第49-61页 |
| ·前言 | 第49页 |
| ·材料与方法 | 第49-53页 |
| ·材料 | 第49-50页 |
| ·水稻材料 | 第49页 |
| ·所用试剂 | 第49页 |
| ·仪器及设备 | 第49-50页 |
| ·方法 | 第50-53页 |
| ·用于HRM分析的水稻DNA提取 | 第50页 |
| ·HRM分析用引物的合成 | 第50页 |
| ·DNA扩增和HRM分析 | 第50-51页 |
| ·常规PCR体系 | 第51页 |
| ·电泳 | 第51-53页 |
| ·HRM反应条件的优化 | 第53页 |
| ·分析软件 | 第53页 |
| ·实验结果 | 第53-57页 |
| ·多态HRM分子标记的筛选 | 第53-54页 |
| ·利用多态HRM分子标记对F_2群体进行基因分型 | 第54-55页 |
| ·HRM反应条件的优化 | 第55-57页 |
| ·分析与讨论 | 第57-61页 |
| ·多态HRM分子标记用于F_2群体基因分型 | 第57页 |
| ·HRM基因分型反应条件优化 | 第57-58页 |
| ·可用于F_2群体基因分型的HRM分子标记特征 | 第58-59页 |
| ·HRM基因分型用于BBM14和BBM66中抗性基因定位 | 第59页 |
| ·HRM基因分型用于BBM14和BBM66中T-DNA插入检测 | 第59-61页 |
| 第5章 总结与展望 | 第61-63页 |
| ·总结 | 第61页 |
| ·展望 | 第61-63页 |
| 参考文献 | 第63-77页 |
| 附录 | 第77-86页 |
| 致谢 | 第86-87页 |
| 攻读硕士期间发表的学术论文 | 第87-88页 |
