| 摘要 | 第1-6页 |
| Abstract | 第6-11页 |
| 第1章 概述 | 第11-13页 |
| 第2章 黄酮类化合物的基本概述 | 第13-19页 |
| ·花生壳 | 第13页 |
| ·黄酮类化合物 | 第13页 |
| ·木犀草素 | 第13-14页 |
| ·黄酮配合物 | 第14页 |
| ·黄酮类化合物的提取和纯化方法 | 第14-16页 |
| ·黄酮类化合物的提取方法 | 第14-15页 |
| ·黄酮类化合物纯化方法 | 第15-16页 |
| ·黄酮类化合物检测方法 | 第16-17页 |
| ·黄酮类化合物及其衍生物生物活性的研究进展 | 第17-18页 |
| ·抗氧化作用 | 第17页 |
| ·抗肿瘤作用 | 第17页 |
| ·抑菌作用 | 第17-18页 |
| ·本论文的研究工作 | 第18-19页 |
| 第3章 微波辅助乙醇提取花生壳总黄酮工艺研究 | 第19-30页 |
| ·引言 | 第19页 |
| ·材料和研究方法 | 第19-22页 |
| ·主要试剂 | 第19-20页 |
| ·主要仪器 | 第20页 |
| ·黄酮含量和木犀草素含量的测定 | 第20-22页 |
| ·实验方法 | 第22页 |
| ·实验结果与讨论 | 第22-27页 |
| ·提取时间对花生壳黄酮化合物提取率的影响 | 第22-23页 |
| ·液料比对花生壳黄酮化合物提取率的影响 | 第23-24页 |
| ·醇浓度对花生壳黄酮化合物提取率的影响 | 第24-25页 |
| ·微波功率对花生壳黄酮化合物提取率的影响 | 第25-26页 |
| ·提取次数对花生壳黄酮化合物提取率的影响 | 第26-27页 |
| ·优化条件下花生壳总黄酮的提取 | 第27-28页 |
| ·HPLC检测花生壳黄酮提取物中木犀草素的含量 | 第28-29页 |
| ·本章小结 | 第29-30页 |
| 第4章 金属螯合法纯化花生壳总黄酮工艺及清除自由基活性研究 | 第30-42页 |
| ·引言 | 第30-31页 |
| ·材料和研究方法 | 第31-34页 |
| ·主要试剂 | 第31页 |
| ·主要仪器 | 第31页 |
| ·实验方法 | 第31-34页 |
| ·结果及分析 | 第34-41页 |
| ·黄酮粗提物溶液pH对黄酮-Ca~(2+)配合物形成的影响 | 第34-35页 |
| ·CaCl_2:黄酮粗提物质量比对黄酮-Ca~(2+)合物形成的影响 | 第35-36页 |
| ·黄酮粗提物初始浓度对黄酮-Ca~(2+)配合物形成的影响 | 第36-37页 |
| ·优化条件下工艺验证实验 | 第37页 |
| ·HPLC检测纯化前后花生壳总黄酮粗提物中木犀草素含量 | 第37-38页 |
| ·纯化前、金属螯合和纯化后花生壳总黄酮对羟基自由基(·OH)的清除能力 | 第38-40页 |
| ·纯化前、金属螯合和纯化后花生壳总黄酮对DPPH·自由基的清除能力 | 第40-41页 |
| ·本章小结 | 第41-42页 |
| 第5章 大孔树脂间歇吸附纯化花生壳总黄酮类化合物 | 第42-61页 |
| ·引言 | 第42页 |
| ·材料和研究方法 | 第42-45页 |
| ·主要试剂 | 第42页 |
| ·主要仪器 | 第42-43页 |
| ·实验方法 | 第43-45页 |
| ·实验结果与讨论 | 第45-59页 |
| ·六种树脂吸附量、吸附率和解吸率的比较 | 第45-46页 |
| ·间歇吸附动力学曲线 | 第46-47页 |
| ·样品溶液pH值对D101型大孔树脂间歇吸附的影响 | 第47-48页 |
| ·间歇吸附等温线 | 第48-54页 |
| ·间歇解吸动力学曲线 | 第54-55页 |
| ·乙醇溶液浓度对解吸过程的影响 | 第55-56页 |
| ·解吸剂溶液pH对间歇解吸的影响 | 第56-57页 |
| ·优化条件下工艺验证试验 | 第57页 |
| ·HPLC检测D101型大孔树脂纯化前后花生壳黄酮粗提物中木犀草素含量 | 第57-59页 |
| ·Ca~(2+)螯合-大孔树脂纯化花生壳总黄酮的HPLC结果 | 第59页 |
| ·本章小结 | 第59-61页 |
| 第6章 总结 | 第61-63页 |
| ·结论 | 第61-62页 |
| ·建议进一步开展的研究工作 | 第62-63页 |
| 参考文献 | 第63-70页 |
| 致谢 | 第70-71页 |
| 攻读硕士学位期间发表文章 | 第71页 |
