| 中文摘要 | 第1-5页 |
| ABSTRACT | 第5-9页 |
| 引言 | 第9-10页 |
| 1文献综述 | 第10-21页 |
| ·重瓣榆叶梅 | 第10页 |
| ·植物蛋白质 | 第10-14页 |
| ·植物蛋白质的功能与应用 | 第10-12页 |
| ·DNA酶的理化性质及生理功能 | 第12-13页 |
| ·RNA酶的理化性质及生理功能 | 第13页 |
| ·细胞色素C的理化性质及生理功能 | 第13-14页 |
| ·蛋白质提取方法 | 第14-16页 |
| ·水溶液提取法 | 第14页 |
| ·有机溶液提取法 | 第14-15页 |
| ·蛋白质的酶提取法 | 第15页 |
| ·超声波提取法 | 第15页 |
| ·双水相萃取法 | 第15页 |
| ·反胶团萃取法 | 第15-16页 |
| ·蛋白质的分离方法 | 第16页 |
| ·简单分离法 | 第16页 |
| ·液相色谱法 | 第16页 |
| ·凝胶电泳法 | 第16页 |
| ·不同分离技术的联合 | 第16页 |
| ·毛细管电泳 | 第16-20页 |
| ·毛细管区带电泳 | 第17页 |
| ·毛细管电动色谱 | 第17-18页 |
| ·毛细管凝胶电泳 | 第18页 |
| ·毛细管等电聚焦 | 第18页 |
| ·涂层毛细管电泳 | 第18-19页 |
| ·毛细管电泳-质谱联用 | 第19页 |
| ·毛细管电泳的应用 | 第19-20页 |
| ·论文研究的内容、目的和意义 | 第20-21页 |
| 2 重瓣榆叶梅花中蛋白质提取工艺优化及含量的动态变化研究 | 第21-32页 |
| ·超声波法原理 | 第21页 |
| ·分光光度法原理 | 第21页 |
| ·实验部分 | 第21-23页 |
| ·材料与试剂 | 第21-22页 |
| ·主要仪器 | 第22页 |
| ·方法 | 第22-23页 |
| ·结果与分析 | 第23-32页 |
| ·标准曲线的绘制 | 第23-24页 |
| ·单因素试验 | 第24-28页 |
| ·正交试验结果 | 第28-29页 |
| ·验证试验结果 | 第29-30页 |
| ·重复性试验结果 | 第30页 |
| ·精密度试验 | 第30页 |
| ·不同开花时期样品中蛋白质含量结果与分析 | 第30-31页 |
| ·讨论 | 第31-32页 |
| 3 HPCE研究重瓣榆叶梅花中DNA酶、RNA酶和细胞色素C含量的动态变化 | 第32-53页 |
| ·毛细管电泳法 | 第32-35页 |
| ·高效毛细管电泳仪的结构 | 第32-35页 |
| ·高效毛细管电泳原理 | 第35-36页 |
| ·高效毛细管电泳分离模式的选择原则 | 第36页 |
| ·高效毛细管的影响因素 | 第36-37页 |
| ·实验部分 | 第37-38页 |
| ·实验材料及试剂 | 第37页 |
| ·实验主要仪器 | 第37页 |
| ·标准溶液及样品溶液的制备 | 第37页 |
| ·HPCE实验方法 | 第37-38页 |
| ·实验结果及分析 | 第38-52页 |
| ·缓冲液体系的确定 | 第38-40页 |
| ·电泳条件的确定 | 第40-44页 |
| ·标准曲线的建立 | 第44页 |
| ·精密度试验 | 第44-45页 |
| ·重复性试验 | 第45页 |
| ·回收试验 | 第45-46页 |
| ·实际样品的测定 | 第46-52页 |
| ·讨论 | 第52-53页 |
| 4 结论与展望 | 第53-56页 |
| ·结果与讨论 | 第53-55页 |
| ·重瓣榆叶梅花中蛋白质提取工艺的优化 | 第53页 |
| ·分离方法的研究 | 第53页 |
| ·HPCE最佳测定条件研究 | 第53-55页 |
| ·本文创新性 | 第55页 |
| ·展望 | 第55-56页 |
| 附表 | 第56-61页 |
| 参考文献 | 第61-67页 |
| 个人简介 | 第67-68页 |
| 导师简介 | 第68-69页 |
| 获得成果目录清单 | 第69-70页 |
| 致谢 | 第70页 |