| 摘要 | 第1-6页 |
| Abstract | 第6-10页 |
| 第1章 绪论 | 第10-21页 |
| ·中华鲟现状的概述 | 第10-12页 |
| ·中华鲟的分类地位和自然分布 | 第11页 |
| ·中华鲟的形态特征与生态习性 | 第11-12页 |
| ·Na~+,K~+-ATPase的研究进展 | 第12-17页 |
| ·NKA基因序列研究进展 | 第13-15页 |
| ·NKA结构和功能的研究进展 | 第15-17页 |
| ·鳃丝NKA渗透调节的研究进展 | 第17-20页 |
| ·鱼类渗透调节过程研究进展 | 第17-18页 |
| ·鱼类鳃丝离子泵的细胞定位研究进展 | 第18-20页 |
| ·本研究目的及意义 | 第20-21页 |
| 第2章 非致死活体取样对鲟鱼生长和生理上的影响 | 第21-30页 |
| ·材料与方法 | 第21-23页 |
| ·试验材料与设计 | 第21-22页 |
| ·杂交鲟NKA酶活性检测 | 第22-23页 |
| ·数据分析 | 第23页 |
| ·结果 | 第23-27页 |
| ·非致死活体取样方法对杂交鲟生长的影响 | 第23-27页 |
| ·非致死活体取样方法对杂交鲟血清离子渗透压和鳃丝NKA酶活力的影响 | 第27页 |
| ·讨论 | 第27-29页 |
| ·非致死取样方法对鲟鱼存活率的影响 | 第27-28页 |
| ·非致死取样方法对鲟鱼生长的影响 | 第28-29页 |
| ·非致死取样方法对鲟鱼NKA酶活性和血清离子渗透压的影响 | 第29页 |
| ·小结及展望 | 第29-30页 |
| 第3章 中华鲟幼鱼鳃丝Na~+,K~+-ATPaseα亚基cDNA克隆和盐度调节 | 第30-42页 |
| ·材料与方法 | 第30-33页 |
| ·试验材料与设计 | 第30-31页 |
| ·NKAα亚基部分基因序列克隆 | 第31-32页 |
| ·RT-PCR检测NKAα亚基mRNA的表达 | 第32-33页 |
| ·NKA活性检测 | 第33页 |
| ·数据分析 | 第33页 |
| ·结果 | 第33-38页 |
| ·中华鲟NKAα亚基基因的部分核苷酸序列 | 第33-36页 |
| ·中华鲟血清Na~+,Cl~-浓度及渗透压变化 | 第36-37页 |
| ·中华鲟鳃丝NKA酶活性变化 | 第37-38页 |
| ·中华鲟鳃丝NKAα亚基mRNA的相对表达 | 第38页 |
| ·讨论 | 第38-41页 |
| ·mRNA片段及其氨基酸的特点 | 第38-39页 |
| ·适应期的分子调节机制 | 第39-40页 |
| ·调整期的分子调节机制 | 第40-41页 |
| ·小结及展望 | 第41-42页 |
| 第4章 中华鲟幼鱼鳃丝NKA和NKCC的免疫荧光定位 | 第42-52页 |
| ·材料与方法 | 第42-43页 |
| ·实验材料与设计 | 第42-43页 |
| ·冰冻切片 | 第43页 |
| ·免疫染色 | 第43页 |
| ·棋盘法测定抗体最佳稀释度 | 第43-44页 |
| ·结果 | 第44-48页 |
| ·抗体最佳稀释浓度测定 | 第44页 |
| ·免疫荧光检测NKA的免疫反应细胞 | 第44-46页 |
| ·免疫荧光检测NKCC的免疫反应细胞 | 第46-47页 |
| ·NKA和NKCC的细胞分布差异 | 第47-48页 |
| ·讨论 | 第48-51页 |
| ·NKA在组织中的分布 | 第48-50页 |
| ·NKCC在组织中的分布 | 第50-51页 |
| ·小结及展望 | 第51-52页 |
| 结论 | 第52-54页 |
| 参考文献 | 第54-65页 |
| 攻读硕士学位期间发表学术论文和参加的科研项目 | 第65-66页 |
| 致谢 | 第66页 |
