| 摘要 | 第1-6页 |
| Abstract | 第6-11页 |
| 英文缩写词表 | 第11-13页 |
| 1 引言 | 第13-27页 |
| ·戊型肝炎研究进展 | 第13-20页 |
| ·戊型肝炎病毒结构及其理化特性 | 第13页 |
| ·戊型肝炎病毒基因组结构 | 第13-16页 |
| ·戊型肝炎的流行病学 | 第16-18页 |
| ·戊型肝炎的临床症状及病理变化 | 第18-19页 |
| ·戊型肝炎的检测方法 | 第19-20页 |
| ·戊型肝炎病毒的体外培养 | 第20-22页 |
| ·原代细胞 | 第20-21页 |
| ·二倍体细胞 | 第21页 |
| ·传代细胞 | 第21-22页 |
| ·单股正链RNA病毒基因组3’非编码区结构与功能分析 | 第22-27页 |
| ·3'UTR结构与功能的主要分析方法 | 第22-23页 |
| ·3'UTR一级结构 | 第23页 |
| ·3'UTR高级结构 | 第23-25页 |
| ·3'UTR结构与功能分析的问题与前景 | 第25-27页 |
| 2 猪戊型肝炎病毒RT-nPCR方法的建立及应用 | 第27-39页 |
| ·材料 | 第27-28页 |
| ·样品 | 第27页 |
| ·主要生化试剂 | 第27页 |
| ·仪器设备 | 第27页 |
| ·常用试剂的配制 | 第27-28页 |
| ·引物设计与合成 | 第28页 |
| ·方法 | 第28-31页 |
| ·RNA的提取 | 第28-29页 |
| ·RT-nPCR | 第29-30页 |
| ·PCR产物纯化 | 第30页 |
| ·PCR产物的测序 | 第30页 |
| ·特异性、敏感性及重复性实验 | 第30-31页 |
| ·猪戊型肝炎病毒对各组织器官感染情况分析 | 第31页 |
| ·猪戊型肝炎病毒感染的季节变化 | 第31页 |
| ·结果 | 第31-35页 |
| ·RT-nPCR检测方法的建立 | 第31-33页 |
| ·猪戊型肝炎病毒的组织分布 | 第33-34页 |
| ·猪戊型肝炎病毒感染的季节变化 | 第34-35页 |
| ·讨论 | 第35-39页 |
| ·猪戊型肝炎病毒检测方法的建立 | 第35-36页 |
| ·猪戊型肝炎病毒的组织分布 | 第36-37页 |
| ·江西省部分地区猪戊型肝炎的检出率及其感染的季节性变化 | 第37-39页 |
| 3 猪戊型肝炎病毒江西株(SHEV-JX)的分离 | 第39-47页 |
| ·材料 | 第39-40页 |
| ·病料 | 第39页 |
| ·细胞株 | 第39页 |
| ·主要生化试剂 | 第39页 |
| ·仪器设备 | 第39-40页 |
| ·常用试剂的配制 | 第40页 |
| ·方法 | 第40-42页 |
| ·A549细胞的培养 | 第40页 |
| ·接毒 | 第40页 |
| ·观察细胞CPE | 第40-41页 |
| ·病毒检测 | 第41-42页 |
| ·结果 | 第42-45页 |
| ·细胞病变(CPE) | 第42-43页 |
| ·RT-nPCR检测 | 第43-45页 |
| ·讨论 | 第45-47页 |
| ·体外培养细胞系的选择 | 第45-46页 |
| ·SHEV病毒江西分离株(SHEV-JX)细胞培养特性 | 第46-47页 |
| 4 猪戊型肝炎病毒江西株部分序列克隆分析及3'UTR生物信息学分析 | 第47-56页 |
| ·材料 | 第47-48页 |
| ·SHEV江西分离株(SHEV-JX) | 第47页 |
| ·主要生化试剂 | 第47页 |
| ·仪器设备 | 第47页 |
| ·常用试剂的配制 | 第47-48页 |
| ·引物设计与合成 | 第48页 |
| ·方法 | 第48-49页 |
| ·细胞总RNA的提取 | 第48页 |
| ·RT-nPCR | 第48页 |
| ·PCR产物纯化 | 第48页 |
| ·基因测序 | 第48页 |
| ·序列拼接及同源性分析 | 第48页 |
| ·3'UTR二级结构分析 | 第48-49页 |
| ·结果 | 第49-54页 |
| ·SHEV西分离株(SHEV-JX)ORF2部分序列及3'UTR序列 | 第49-50页 |
| ·3'UTR序列分析 | 第50-53页 |
| ·poly(A)长度对SHEV 3'UTR级结构的影响 | 第53-54页 |
| ·讨论 | 第54-56页 |
| ·序列同源性 | 第54-55页 |
| ·SHEV-JX株3’UTR结构预测 | 第55-56页 |
| 5 全文总结 | 第56-57页 |
| 参考文献 | 第57-62页 |
| 致谢 | 第62-63页 |
| 作者简介 | 第63页 |
