| 摘要 | 第1-6页 |
| Abstract | 第6-11页 |
| 英文缩略词表(ABBREVIATION) | 第11-12页 |
| 引言 | 第12-16页 |
| 1 前言 | 第16-20页 |
| 2 材料、试剂与仪器 | 第20-26页 |
| ·主要实验材料 | 第20页 |
| ·主要试剂 | 第20页 |
| ·主要试剂配制 | 第20-24页 |
| ·主要仪器 | 第24-26页 |
| 3 实验方法 | 第26-46页 |
| ·稳定转染 NCIH-1299 细胞 | 第26页 |
| ·亚克隆获得稳定高表达 Foxp3 的细胞株 NCIHpcDNA3-hFoxp3 | 第26-27页 |
| ·RT-PCR 验证转染的效果 | 第27-30页 |
| ·WB 验证转染的效果 | 第30-35页 |
| ·免疫细胞化学方法验证转染的效果 | 第35-36页 |
| ·人体外周血单个核细胞的分离 | 第36-37页 |
| ·人体外周血 T 淋巴细胞的体外活化 | 第37页 |
| ·ELISA 方法检测 NCIH-1299pcDNA3-hFoxp3 和 NCIH-1299 两组细胞 IL-8、IL-10表达量的差异 | 第37-38页 |
| ·ELISA 方法检测活化的 T 淋巴细胞与 NCIH-1299pcDNA3-hFoxp3 和 NCIH-1299两组细胞共培养后 IL-2 表达量的变化 | 第38-39页 |
| ·免疫细胞化学方法观察 Foxp3 的高表达对 T 淋巴细胞侵润能力的影响28 | 第39页 |
| ·MTT 方法检测 NCIH-1299pcDNA3-hFoxp3 和 NCIH-1299 两组细胞与活化的 T淋巴细胞共培养时细胞增殖的变化 | 第39-40页 |
| ·Foxp3 的高表达对活化的 T 淋巴细胞的细胞毒作用的影响 | 第40-41页 |
| ·移植瘤小鼠模型的建立 | 第41-42页 |
| ·观察小鼠成瘤的动态变化 | 第42页 |
| ·WB 方法检测小鼠肿瘤组织中 Foxp3 的表达 | 第42-43页 |
| ·免疫组织化学方法检测小鼠肿瘤组织中 Foxp3 的表达 | 第43-46页 |
| 4 实验结果 | 第46-56页 |
| ·成功建立稳定高表达 Foxp3 的细胞株 NCIHpcDNA3-hFoxp3 | 第46-48页 |
| ·人体外周血 T 淋巴细胞的体外活化 | 第48页 |
| ·ELISA 方法检测 NCIH-1299pcDNA3-hFoxp3 和 NCIH-1299 两组细胞 IL-8、IL-10表达量的差异 | 第48-50页 |
| ·ELISA 方法检测活化的 T 淋巴细胞与 NCIH-1299pcDNA3-hFoxp3 和 NCIH-1299两组细胞共培养后 IL-2 表达量的变化 | 第50页 |
| ·免疫细胞化学方法观察 Foxp3 的高表达对 T 淋巴细胞侵润能力的影响 | 第50-51页 |
| ·NCIH-1299pcDNA3-hFoxp3 和 NCIH-1299 两组细胞与 T 淋巴细胞共培养时细胞增殖的变化 | 第51-52页 |
| ·Foxp3 的高表达对 T 淋巴细胞细胞毒作用的影响 | 第52-53页 |
| ·移植瘤小鼠模型的建立及其成瘤的动态变化 | 第53-54页 |
| ·WB 方法检测两组小鼠肿瘤组织中 Foxp3 表达量的差异 | 第54-55页 |
| ·免疫组织化学方法检测两组小鼠肿瘤组织中 Foxp3 表达的差异 | 第55-56页 |
| 5 讨论 | 第56-60页 |
| 结论 | 第60-62页 |
| 参考文献 | 第62-66页 |
| 文献综述 | 第66-76页 |
| 参考文献 | 第73-76页 |
| 致谢 | 第76-78页 |
| 研究生期间发表的学术论文与研究成果 | 第78-79页 |
