| 摘要 | 第1-10页 |
| Abstract | 第10-13页 |
| 前言 | 第13-22页 |
| 参考文献 | 第17-22页 |
| 第一章 TGI1002对接触性皮炎的作用 | 第22-39页 |
| 1 绪言 | 第22页 |
| 2 实验材料与方法 | 第22-27页 |
| ·药品与试剂 | 第22-23页 |
| ·实验动物 | 第23页 |
| ·Picryl chloride诱导的小鼠耳肿胀模型的建立 | 第23-24页 |
| ·二甲苯诱导的小鼠耳肿胀模型的建立 | 第24页 |
| ·耳组织切片及评分 | 第24-25页 |
| ·RNA提取 | 第25页 |
| ·去除RNA中的DNA污染 | 第25-26页 |
| ·RT-PCR获得cDNA | 第26页 |
| ·Real-time PCR检测相关基因表达 | 第26页 |
| ·统计分析 | 第26-27页 |
| 3 实验结果 | 第27-34页 |
| ·小鼠接触性皮炎中耳肿胀随时间变化的关系曲线 | 第27-28页 |
| ·TGI1002可显著的抑制小鼠耳肿胀 | 第28-29页 |
| ·TGI1002可显著的改善接触性皮炎的病理变化 | 第29-31页 |
| ·TGI1002可抑制接触性皮炎模型中相关细胞因子的释放 | 第31-33页 |
| ·TGI1002不可抑制二甲苯诱导的小鼠耳肿胀 | 第33-34页 |
| 4 讨论 | 第34-36页 |
| 5 小结 | 第36-37页 |
| 6 参考文献 | 第37-39页 |
| 第二章 TGI1002对接触性皮炎的作用机理研究 | 第39-65页 |
| 1 绪言 | 第39页 |
| 2 实验材料与方法 | 第39-46页 |
| ·实验试剂 | 第39-41页 |
| ·实验仪器 | 第41页 |
| ·实验动物 | 第41页 |
| ·小鼠淋巴结细胞的制备 | 第41页 |
| ·小鼠脾细胞悬液的制备 | 第41-42页 |
| ·丝裂原Con A致正常小鼠T淋巴细胞增殖和功能试验 | 第42页 |
| ·Anti-CD3/CD28致正常小鼠T淋巴细胞增殖和功能试验 | 第42页 |
| ·体内致敏的淋巴细胞在体外的特异性扩增实验 | 第42-43页 |
| ·流式细胞术检测T细胞活化 | 第43页 |
| ·流式细胞术检测T细胞凋亡 | 第43-44页 |
| ·流式细胞术检测T细胞周期 | 第44页 |
| ·被动转移实验 | 第44页 |
| ·酶联免疫吸附法(enzyme linked immunosorbent assay,ELISA) | 第44-45页 |
| ·免疫印迹分析(Western blot analysis) | 第45-46页 |
| 3 实验结果 | 第46-57页 |
| ·TGI1002可抑制淋巴细胞被动转移接触性皮炎反应 | 第46-47页 |
| ·TGI1002可抑制TNBS刺激的致敏淋巴结细胞的增殖 | 第47-48页 |
| ·TGI1002对T淋巴细胞增殖的影响 | 第48-50页 |
| ·TGI1002可抑制T淋巴细胞的活化 | 第50-51页 |
| ·TGI1002对T淋巴细胞细胞周期的影响 | 第51-53页 |
| ·TGI1002可促进T淋巴细胞的凋亡 | 第53-54页 |
| ·TGI1002对T淋巴细胞分泌的相关细胞因子的影响 | 第54-56页 |
| ·TGI1002对IFN-γ/STAT1信号通路相关蛋白的影响 | 第56-57页 |
| 4 讨论 | 第57-61页 |
| 5 小结 | 第61-62页 |
| 6 参考文献 | 第62-65页 |
| 附录一 缩略语表 | 第65-67页 |
| 附录二 发表论文情况 | 第67-68页 |
| 致谢 | 第68-69页 |
