| 摘要 | 第1-12页 |
| ABSTRACT | 第12-16页 |
| 部分缩写的中英文对照 | 第16-17页 |
| 第一篇 文献综述 | 第17-34页 |
| 第一章 PCV2致感染仔猪免疫抑制的研究进展 | 第18-28页 |
| 1 PCV2相关疾病与现状 | 第18-19页 |
| 2 PMWS临床症状 | 第19页 |
| 3 肉眼病变 | 第19页 |
| 4 组织病理学变化 | 第19-20页 |
| 5 血液学变化 | 第20页 |
| 6 病毒在机体及靶细胞上的分布 | 第20-21页 |
| 7 免疫刺激对PCV2感染的促进作用 | 第21-22页 |
| 8 PCV-2对免疫细胞的影响 | 第22-25页 |
| ·PCV-2对外周血中免疫细胞及其亚群的影响 | 第22-23页 |
| ·PCV-2对淋巴组织中免疫细胞及其亚群的影响 | 第23-25页 |
| ·PCV2对非淋巴组织中免疫细胞的影响 | 第25页 |
| 9 PCV2对细胞因子(cytokine)的影响 | 第25-26页 |
| 10 PCV2感染对仔猪抗氧化能力的影响 | 第26-28页 |
| 第二章 病毒感染与细胞凋亡 | 第28-34页 |
| 1 细胞凋亡概述 | 第28页 |
| 2 细胞凋亡的途径 | 第28-30页 |
| ·细胞凋亡的膜受体途径 | 第28-29页 |
| ·细胞凋亡的线粒体途径 | 第29页 |
| ·细胞凋亡的内质网途径 | 第29-30页 |
| 3 病毒感染与细胞凋亡 | 第30-31页 |
| ·病毒感染诱导细胞凋亡的途径 | 第30页 |
| ·经免疫系统介导凋亡 | 第30-31页 |
| ·病毒直接诱导凋亡 | 第31页 |
| 4 病毒感染与淋巴细胞凋亡 | 第31-32页 |
| 5 诱导淋巴细胞凋亡的几种病毒 | 第32-34页 |
| ·禽流感病毒 | 第32页 |
| ·人类免疫缺陷病毒 | 第32页 |
| ·传染性法氏囊病毒 | 第32-33页 |
| ·猪瘟病毒 | 第33页 |
| ·猪圆环病毒 | 第33-34页 |
| 引言 | 第34-36页 |
| 第二篇 实验研究 | 第36-112页 |
| 第三章 巨噬细胞介导PCV2诱导体外培养仔猪淋巴细胞凋亡的初步研究 | 第38-56页 |
| 1 材料与方法 | 第40-47页 |
| ·主要仪器与试剂 | 第40-41页 |
| ·病毒 | 第41-42页 |
| ·试验动物 | 第42页 |
| ·淋巴细胞与巨噬细胞的制备 | 第42页 |
| ·试验分组与处理 | 第42-43页 |
| ·淋巴细胞凋亡率的测定 | 第43页 |
| ·淋巴细胞总RNA的提取 | 第43-44页 |
| ·Fas和FasL mRNA的RT-PCR检测 | 第44页 |
| ·淋巴细胞cAMP和cGMP的检测 | 第44-46页 |
| ·统计学处理 | 第46-47页 |
| 2 结果 | 第47-54页 |
| ·病毒悬液鉴定结果 | 第47页 |
| ·淋巴细胞凋亡率的变化 | 第47页 |
| ·Fas和FasL mRNA转录水平 | 第47-52页 |
| ·cAMP和cGMP的检测结果 | 第52-54页 |
| 3 讨论 | 第54-55页 |
| 结论 | 第55-56页 |
| 第四章 仔猪PCV2感染模型的复制 | 第56-72页 |
| 1 材料与方法 | 第58-60页 |
| ·主要试剂和仪器 | 第58页 |
| ·病毒 | 第58-59页 |
| ·实验动物及处理 | 第59页 |
| ·病毒血症的检测 | 第59页 |
| ·血清PCV2抗体滴度的检测 | 第59-60页 |
| ·血清细胞色素C的测定 | 第60页 |
| 2 试验结果 | 第60-68页 |
| ·临床表现 | 第60-61页 |
| ·肉眼病理变化 | 第61页 |
| ·组织病理学变化 | 第61-63页 |
| ·病毒血症的检测 | 第63页 |
| ·血清抗体滴度的测定 | 第63页 |
| ·血清细胞色素C浓度测定 | 第63-68页 |
| 3 讨论 | 第68-72页 |
| 第五章 PCV2感染仔猪腹股沟淋巴结细胞凋亡的变化及主要凋亡途径的研究 | 第72-96页 |
| 1 材料与方法 | 第75-80页 |
| ·主要试剂和仪器 | 第75页 |
| ·病毒 | 第75-76页 |
| ·实验动物及处理 | 第76页 |
| ·腹股沟淋巴结细胞凋亡率的测定 | 第76页 |
| ·血清sFas/sFasL的ELIAS检测 | 第76页 |
| ·腹股沟淋巴结总RNA的处理 | 第76-77页 |
| ·荧光定量RT-PCR检测腹股沟淋巴结Fas/FasL及bcl-2/bax mRNA表达 | 第77-78页 |
| ·分光光度法测定腹股沟淋巴结中caspase-3、caspase-8以及caspase-9活性 | 第78页 |
| ·细胞内Ca~(2+)浓度的测定 | 第78-79页 |
| ·Ca~(2+)-ATP酶活力的测定 | 第79页 |
| ·CaMKⅡmRNA荧光定量PCR检测 | 第79页 |
| ·cAMP、cGMP含量的测定 | 第79页 |
| ·数据分析 | 第79-80页 |
| 2 结果与分析 | 第80-92页 |
| ·淋巴结细胞凋亡的变化 | 第80页 |
| ·血清sFas/sFasL浓度的变化 | 第80-81页 |
| ·腹股沟淋巴结Fas/FasL以及bcl-2/bax mRNA转录的变化 | 第81页 |
| ·腹股沟淋巴结中caspase-3、caspase-8及caspase-9活性的变化 | 第81-88页 |
| ·腹股沟淋巴结细胞内[Ca~(2+)]及Ca~(2+)-ATP酶活性的变化 | 第88页 |
| ·CaMKⅡ mRNA相对表达量的变化 | 第88-89页 |
| ·腹股沟淋巴结细胞cAMP、cGMP含量及cAMP/cGMP比值的变化 | 第89-92页 |
| 3 讨论 | 第92-95页 |
| 结论 | 第95-96页 |
| 第六章 PCV2感染仔猪脾脏淋巴细胞凋亡的变化及主要凋亡途径的研究 | 第96-112页 |
| 1 材料与方法 | 第99-102页 |
| ·主要试剂和仪器 | 第99页 |
| ·病毒 | 第99页 |
| ·实验动物 | 第99-100页 |
| ·脾脏细胞凋亡率的测定 | 第100页 |
| ·脾脏总RNA的提取 | 第100页 |
| ·荧光定量PCR对脾脏Fas/FasL及bcl-2/bax mRNA的相对表达量的检测 | 第100页 |
| ·Caspase-3、caspase-8以及caspase-9活性的检测 | 第100-101页 |
| ·细胞内Ca~(2+)浓度的测定 | 第101页 |
| ·Ca~(2+)-ATP酶活力的测定 | 第101-102页 |
| ·CaMKⅡ mRNA荧光定量PCR检测 | 第102页 |
| ·cAMP、cGMP含量的测定 | 第102页 |
| ·数据分析 | 第102页 |
| 2 结果与分析 | 第102-107页 |
| ·PCV2感染对仔猪脾脏细胞凋亡率的影响 | 第102-103页 |
| ·PCV2感染对仔猪脾脏Fas/FasL mRNA表达的影响 | 第103页 |
| ·PCV2感染对仔猪脾脏bcl-2/bax mRNA表达的影响 | 第103-105页 |
| ·PCV2感染后仔猪脾脏caspase-3、caspase-8及caspase-9的活性变化 | 第105页 |
| ·PCV2感染后仔猪脾脏细胞内Ca~(2+)浓度及Ca~(2+)-ATP酶活性的变化 | 第105-106页 |
| ·PCV2感染后仔猪脾脏CaMKⅡmRNA相对表达量的变化 | 第106-107页 |
| ·PCV2感染后脾脏细胞cAMP、cGMP含量及cAMP/cGMP比值的变化 | 第107页 |
| 3 讨论 | 第107-110页 |
| 结论 | 第110-112页 |
| 参考文献 | 第112-132页 |
| 全文结论 | 第132-134页 |
| 本文创新点 | 第134-136页 |
| 致谢 | 第136-138页 |
| 论文发表情况 | 第138页 |
