| 第一章 绪论 | 第1-34页 |
| 1 PD 的流行病学 | 第12-13页 |
| 2 PD 的病因及危险因素 | 第13-17页 |
| ·病因 | 第13页 |
| ·PD 的危险因素 | 第13-17页 |
| 3 PD 的发病机制 | 第17-21页 |
| ·线粒体的损伤 | 第17页 |
| ·兴奋神经毒作用 | 第17-18页 |
| ·氧化应激 | 第18-19页 |
| ·神经细胞凋亡 | 第19-20页 |
| ·脑内免疫学假说 | 第20-21页 |
| ·铁离子与 PD 的关系 | 第21页 |
| 4 PD 的治疗 | 第21-30页 |
| ·药物治疗 | 第21-24页 |
| ·PD 的外科治疗 | 第24页 |
| ·基因治疗 | 第24页 |
| ·针灸治疗 PD | 第24-25页 |
| ·神经保护性治疗 | 第25-30页 |
| 5 PD 的模型建立 | 第30-34页 |
| ·PD 体外细胞模型 | 第30-32页 |
| ·PD 体内细胞模型 | 第32-34页 |
| 第二章 材料与方法 | 第34-44页 |
| 1 材料 | 第34-35页 |
| ·主要试剂 | 第34-35页 |
| ·主要仪器 | 第35页 |
| ·实验动物 | 第35页 |
| ·实验备品 | 第35页 |
| 2 方法 | 第35-43页 |
| ·大鼠体外 PD 和 CC 神经保护实验模型建立 | 第35-37页 |
| ·中脑细胞的原代培养 | 第35-36页 |
| ·PD和 CC 神经保护实验模型制作 | 第36页 |
| ·实验分组 | 第36页 |
| ·实验流程 | 第36-37页 |
| ·TH 免疫组化 | 第37页 |
| ·TH 抗体蛋白检测 | 第37页 |
| ·细胞活力检测 | 第37-39页 |
| ·6-OHDA 作用于中脑原代培养细胞的量效和时程关系 | 第37-38页 |
| ·CC 对中脑原代培养细胞的作用 | 第38页 |
| ·CC 作用不同天数对6-OHDA 神经毒的保护作用 | 第38页 |
| ·CC 对6-OHDA 神经毒的保护作用 | 第38页 |
| ·谷氨酸兴奋性神经毒作用 | 第38-39页 |
| ·CC 对谷氨酸神经毒的保护作用 | 第39页 |
| ·细胞内[Ca~(2+)]i 检测 | 第39页 |
| ·神经细胞周期及凋亡检测 | 第39-40页 |
| ·凋亡相关蛋白检测 | 第40页 |
| ·抗氧化应激作用检测 | 第40-42页 |
| ·细胞内活性氧水平的测定 | 第40页 |
| ·抗氧化酶类检测 | 第40-41页 |
| ·丙二醛检测 | 第41-42页 |
| ·NO 及 NOS 检测 | 第42页 |
| ·样本处理 | 第42页 |
| ·一氧化氮 | 第42页 |
| ·一氧化氮合酶 | 第42页 |
| ·线粒体膜电位(Δψm)检测 | 第42-43页 |
| ·乳酸脱氢酶(LDH)漏出检测 | 第43页 |
| ·荧光显微镜观察细胞膜通透性 | 第43页 |
| 3 统计学方法 | 第43-44页 |
| 第三章 实验结果 | 第44-76页 |
| 1 细胞活力检测结果(MTT 法) | 第44-57页 |
| ·6-OHDA 作用于培养体系的时程、剂量反应关系 | 第44-48页 |
| ·6-OHDA 作用于培养体系0.5 h 的细胞活力 | 第45页 |
| ·6-OHDA 作用于培养体系2 h 的细胞活力 | 第45-46页 |
| ·6-OHDA 作用于培养体系6 h 的细胞活力 | 第46-47页 |
| ·6-OHDA 作用于培养体系24 h 的细胞活力 | 第47页 |
| ·6-OHDA 作用于培养体系48 h 的细胞活力 | 第47-48页 |
| ·加入不同浓度和次数的 CC 对6-OHDA 神经毒的保护作用 | 第48-52页 |
| ·2mmol/LCC 加入不同次数对6-OHDA 神经毒的保护作用 | 第48-49页 |
| ·1mmol/LCC 加入不同次数对6-OHDA 神经毒的保护作用 | 第49-50页 |
| ·0.1 mmol/LCC 加入不同次数对6-OHDA 神经毒的保护作用 | 第50页 |
| ·0.01 mmol/LCC 加入不同次数对6-OHDA 神经毒的保护作用 | 第50-51页 |
| ·0.001 mmol/LCC加入不同天数对6-OHDA神经毒的保护作用 | 第51-52页 |
| ·不同浓度 CC 对中脑原代培养细胞的作用 | 第52-54页 |
| ·不同浓度 CC 对6-OHDA 神经毒的保护作用 | 第54-55页 |
| ·谷氨酸兴奋性神经毒作用 | 第55-57页 |
| ·不同浓度谷氨酸对中脑原代培养细胞活力的影响 | 第55-56页 |
| ·CC 对谷氨酸所致损伤的保护作用 | 第56-57页 |
| 2 形态学观察 | 第57-59页 |
| ·中脑细胞原代培养第6 d 形态学观察 | 第57页 |
| ·荧光显微镜下观察细胞膜通透性 | 第57页 |
| ·TH 免疫组化和 TH 阳性细胞观察 | 第57-59页 |
| 3 细胞内游离钙[Ca~(2+)]i检测结果 | 第59-60页 |
| 4 TH 抗体蛋白表达检测 | 第60-61页 |
| 5 线粒体膜电位(Δψm)检测结果 | 第61-62页 |
| 6 培养上清中 LDH 漏出检测结果 | 第62-63页 |
| 7 氧化应激相关物质检测结果 | 第63-68页 |
| ·活性氧的检测结果 | 第63-65页 |
| ·氧化应激相关酶类检测结果 | 第65-67页 |
| ·过氧化氢酶 | 第65-66页 |
| ·超氧化物歧化酶 | 第66-67页 |
| ·谷胱甘肽过氧化物酶 | 第67页 |
| ·丙二醛检测结果 | 第67-68页 |
| 8 凋亡检测结果 | 第68-70页 |
| 9 凋亡蛋白检测结果 | 第70-72页 |
| 10 CC 对 PD 模型中神经细胞周期的影响 | 第72-73页 |
| 11 一氧化氮合酶检测结果 | 第73-74页 |
| 12 一氧化氮检测结果 | 第74-76页 |
| 第四章 讨论 | 第76-93页 |
| 1 多巴胺能神经元的鉴定 | 第76-77页 |
| 2 6-OHDA对多巴胺能神经元的神经毒作用及其机制 | 第77-78页 |
| 3 神经保护药治疗PD现状 | 第78-81页 |
| ·神经保护剂发挥其作用的机制 | 第78-79页 |
| ·神经保护剂对抗6-OHDA 的神经毒作用 | 第79-81页 |
| 4 神经保护剂CC的保护作用 | 第81-93页 |
| ·CC 保护线粒体功能 | 第81-82页 |
| ·CC 对抗谷氨酸兴奋性神经毒作用 | 第82-83页 |
| ·CC 能降低细胞内[Ca~(2+)]i 浓度减少凋亡 | 第83-84页 |
| ·CC 抑制神经细胞凋亡作用 | 第84-86页 |
| ·CC 对抗氧化应激作用 | 第86-89页 |
| ·CC 减少活性氧的产生 | 第86-88页 |
| ·CC 增加抗氧化酶的活性 | 第88-89页 |
| ·CC 能减少丙二醛的量 | 第89页 |
| ·CC 对 PD 模型中一氧化氮的作用 | 第89-90页 |
| ·CC 对 PD 模型中一氧化氮合酶的作用 | 第90-91页 |
| ·CC 对 PD 模型中细胞周期的作用 | 第91-93页 |
| 第五章 结论 | 第93-95页 |
| 参考文献 | 第95-109页 |
| 发表论文 | 第109-110页 |
| 课题项目 | 第110-111页 |
| 致谢 | 第111-112页 |
| 附图 | 第112-113页 |
| 中文摘要 | 第113-120页 |
| 英文摘要 | 第120-127页 |
