| 中文摘要 | 第1-8页 |
| 英文摘要 | 第8-11页 |
| 本文主要缩写词 | 第11-12页 |
| 引言 | 第12-13页 |
| 1 文献综述 | 第13-32页 |
| ·植物光合作用基因工程研究进展 | 第13-22页 |
| ·植物叶片衰老的研究进展 | 第22-29页 |
| ·叶片衰老相关基因 | 第24-26页 |
| ·转IPT基因植物研究 | 第26-29页 |
| ·利用共转化系统去除选择标记基因研究进展 | 第29-31页 |
| ·本研究的目的与意义 | 第31-32页 |
| 2 材料与方法 | 第32-48页 |
| ·实验材料 | 第32-35页 |
| ·植物材料 | 第32页 |
| ·菌株与质粒 | 第32-34页 |
| ·主要试剂与仪器 | 第34页 |
| ·水稻遗传转化培养基 | 第34-35页 |
| ·实验方法 | 第35-48页 |
| ·台粳9号再生体系的建立 | 第35页 |
| ·农杆菌介导的台粳9号遗传转化体系的建立 | 第35-36页 |
| ·农杆菌介导的IPT和PEPC基因共转化台粳9号 | 第36-37页 |
| ·转基因水稻植株的分子检测 | 第37-39页 |
| ·转基因水稻植株的光合速率测定 | 第39页 |
| ·菌种的活化及质粒的提取、酶切、回收、连接和转化 | 第39-43页 |
| ·植物表达载体pCAMBIA1300-PEPC的构建过程 | 第43-45页 |
| ·植物双元质粒表达载体pCAMBIA1300-PEPC导入农杆菌及其鉴定 | 第45-48页 |
| 3 结果与分析 | 第48-63页 |
| ·台粳9号再生体系的建立植物表达载体pCAMBIA1300-PEPC的构建过程 | 第48-49页 |
| ·不同外植体对愈伤诱导的影响 | 第48页 |
| ·培养基种类对愈伤诱导的影响 | 第48-49页 |
| ·分化培养基中不同的激素配比对愈伤分化的影响 | 第49页 |
| ·农杆菌介导的台粳9号遗传转化体系的建立 | 第49-53页 |
| ·菌液浓度对瞬时表达率的影响 | 第49-50页 |
| ·愈伤组织预培养天数对瞬时表达率的影响 | 第50-51页 |
| ·共培养时间对瞬时表达率的影响 | 第51页 |
| ·添加不同的乙酰丁香酮浓度对瞬时表达率的影响 | 第51-53页 |
| ·农杆菌介导的IPT和PEPC基因共转化台粳9号 | 第53-55页 |
| ·转基因水稻植株的分子检测 | 第55-57页 |
| ·转PEPC基因水稻的PCR检测 | 第55页 |
| ·转IPT基因水稻的GUS检测 | 第55-56页 |
| ·转IPT基因水稻的PCR检测 | 第56-57页 |
| ·转基因水稻植株的光合速率测定 | 第57-59页 |
| ·植物表达载体pCAMBIA1300-PEPC的构建过程 | 第59-62页 |
| ·植物表达载体导入农杆菌 | 第62-63页 |
| 4 讨论 | 第63-66页 |
| ·台粳9号再生体系的建立 | 第63页 |
| ·农杆菌介导的台粳9号遗传转化体系 | 第63页 |
| ·农杆菌介导的IPT和PEPC基因共转化台粳9号 | 第63-64页 |
| ·转基因水稻植株的光合速率的测定 | 第64页 |
| ·植物表达载体pCAMBIA1300-PEPC的构建 | 第64-66页 |
| 附件 | 第66-71页 |
| 参考文献 | 第71-84页 |
| 致谢 | 第84页 |
