| 中文摘要 | 第1-13页 |
| 英文摘要 | 第13-18页 |
| 前言 | 第18-20页 |
| 第一篇 文献综述 | 第20-52页 |
| 第一章 抑制素作用机制研究进展 | 第20-35页 |
| 1 抑制素的来源与特性 | 第20-21页 |
| ·抑制素特性 | 第20页 |
| ·抑制素来源 | 第20-21页 |
| 2 抑制素分泌的调节 | 第21-22页 |
| 3 抑制素作用机制 | 第22-24页 |
| ·抑制素作用于垂体 | 第22页 |
| ·抑制素作用于下丘脑 | 第22-23页 |
| ·抑制素的自分泌与旁分泌机制 | 第23-24页 |
| 4 抑制素受体研究进展 | 第24-26页 |
| ·抑制素受体假说 | 第24-26页 |
| 5 抑制素与受体结合作用机理 | 第26-27页 |
| 6 参考文献 | 第27-35页 |
| 第二章 血脑屏障模型及其药物通过血脑屏障的研究进展 | 第35-45页 |
| 1 血脑屏障模型的建立与评价 | 第35-37页 |
| ·脑血管碎段模型 | 第35-36页 |
| ·脑微血管内皮细胞模型 | 第36页 |
| ·血管内皮细胞和兴型胶质细胞共同培养模型 | 第36页 |
| ·血脑屏障模型的评价 | 第36-37页 |
| 2 药物通过血脑屏障的方式 | 第37-38页 |
| ·被动扩散 | 第37页 |
| ·易化扩散 | 第37页 |
| ·主动转运 | 第37-38页 |
| ·酶屏障 | 第38页 |
| ·脑特殊区的药物转运 | 第38页 |
| 3 影响血脑屏障通透性的因素 | 第38-41页 |
| ·自由基对血脑屏障通透性的影响 | 第38-39页 |
| ·脑血管活性物质及其因子血脑屏障通透性的影响 | 第39-40页 |
| ·酶对血脑屏障通透性的影响 | 第40页 |
| ·药物的理化性质对其通过血脑屏障的影响 | 第40-41页 |
| 4 参考文献 | 第41-45页 |
| 第三章 抑制素的研究方法及其应用 | 第45-52页 |
| 1 抑制素的研究方法 | 第45-46页 |
| ·生物测定法 | 第45页 |
| ·免疫学测定法 | 第45-46页 |
| ·分子杂交技术 | 第46页 |
| 2 抑制素的应用 | 第46-48页 |
| ·抑制素在家畜繁殖上的应用 | 第46-47页 |
| ·抑制素在医学上的应用 | 第47-48页 |
| 3 参考文献 | 第48-52页 |
| 第二篇 实验研究 | 第52-107页 |
| 第一章 应用磁珠免疫亲和层析法从猪卵泡液中提取抑制素 | 第52-64页 |
| 1 材料与方法 | 第52-54页 |
| ·材料 | 第52-53页 |
| ·方法 | 第53-54页 |
| ·猪卵泡液的采集 | 第53页 |
| ·猪卵泡抑制素粗提物的制备 | 第53页 |
| ·磁珠免疫亲和层析法提纯抑制素 | 第53页 |
| ·卵泡抑制素免疫活性测定 | 第53-54页 |
| ·提取物纯度鉴定(SDS-PAGE、PAGE) | 第54页 |
| 2 结果 | 第54-60页 |
| ·卵泡抑制素粗品 | 第54页 |
| ·卵泡抑制素粗品凝胶层析法提纯 | 第54-57页 |
| ·磁珠免疫亲和层析法提纯抑制素 | 第57-60页 |
| 3 讨论 | 第60-61页 |
| 4 参考文献 | 第61-64页 |
| 第二章 猪血脑屏障内皮细胞微囊的制备与鉴定 | 第64-71页 |
| 1 材料与方法 | 第64-66页 |
| ·材料 | 第64-65页 |
| ·方法 | 第65-66页 |
| ·微血管的分离及内皮细胞微囊制备 | 第65页 |
| ·蛋白浓度测定 | 第65页 |
| ·微血管和内皮细胞微囊的倒置显微镜检查 | 第65页 |
| ·透射电镜检查 | 第65-66页 |
| ·酶活性测定 | 第66页 |
| 2 结果 | 第66-68页 |
| ·制备物的蛋白质浓度 | 第66页 |
| ·形态学检查 | 第66-67页 |
| ·微血管和内皮细胞微囊的显微解结构 | 第66页 |
| ·内皮细胞微囊解构 | 第66-67页 |
| ·酶活性测定结果 | 第67-68页 |
| 3 分析与讨论 | 第68-69页 |
| 4 参考文献 | 第69-71页 |
| 第三章 母猪血脑屏障内皮细胞微囊转运卵泡抑制素动力学研究 | 第71-84页 |
| 1 材料与方法 | 第71-73页 |
| ·材料 | 第71-72页 |
| ·设备 | 第72页 |
| ·方法 | 第72-73页 |
| ·最佳工作条件选择 | 第72-73页 |
| ·血脑屏障内皮细胞微囊转运卵泡抑制素 | 第73页 |
| 2 结果 | 第73-80页 |
| ·微囊转运卵泡抑制素最佳工作条件确定 | 第73-79页 |
| ·最佳工作浓度 | 第73-75页 |
| ·最适反应时间 | 第75页 |
| ·标记物最适工作浓度 | 第75页 |
| ·微囊转运的离子依赖性 | 第75-78页 |
| ·最适渗透压 | 第78-79页 |
| ·猪血脑屏障内皮细胞微囊转运卵泡抑制素 | 第79-80页 |
| 3 讨论 | 第80-82页 |
| 4 参考文献 | 第82-84页 |
| 第四章 大鼠注射~(125)I标记抑制素后垂体和下丘脑放射自显影分析 | 第84-90页 |
| 1 材料与方法 | 第84-85页 |
| ·材料 | 第84页 |
| ·设备 | 第84页 |
| ·方法 | 第84-85页 |
| ·大鼠垂体与下丘脑放射性检测 | 第85页 |
| ·用放射自显影技术检测~(125)I-INH在垂体与下丘脑分布 | 第85页 |
| 2 结果 | 第85-87页 |
| ·~(125)I-INH标记物质量鉴定 | 第85页 |
| ·~(125)I-INH在垂体和下丘脑的分布 | 第85页 |
| ·大鼠垂体放射自显影 | 第85-87页 |
| 3 讨论 | 第87-89页 |
| 4 参考文献 | 第89-90页 |
| 第五章 大鼠垂体抑制素免疫组织化学定位 | 第90-95页 |
| 1 材料与方法 | 第90-91页 |
| ·材料 | 第90页 |
| ·设备 | 第90页 |
| ·方法 | 第90-91页 |
| ·制片 | 第90-91页 |
| ·大鼠免疫组织化学定位 | 第91页 |
| 2 结果 | 第91-93页 |
| 3 讨论 | 第93-94页 |
| 4 参考文献 | 第94-95页 |
| 第六章 猪垂体抑制素受体荧光组织化学定位 | 第95-102页 |
| 1 材料与方法 | 第95-96页 |
| ·材料 | 第95页 |
| ·设备 | 第95页 |
| ·方法 | 第95-96页 |
| ·制片 | 第95页 |
| ·荧光素标记抑制素 | 第95-96页 |
| ·荧光标记抑制素(FITC-INHIBIN)的鉴定 | 第96页 |
| ·垂体组织抑制素受体荧光组织化学分析 | 第96页 |
| 2 结果 | 第96-98页 |
| ·FITC标记抑制素的鉴定结果 | 第96-97页 |
| ·猪垂体组织抑制素受体荧光组织化学观察 | 第97页 |
| ·抑制素受体阳性细胞的阻断效果 | 第97-98页 |
| 3 讨论 | 第98-99页 |
| 4 参考文献 | 第99-102页 |
| 第七章 猪垂体卵泡抑制素的提取 | 第102-107页 |
| 1 材料与方法 | 第102-103页 |
| ·材料 | 第102页 |
| ·设备 | 第102页 |
| ·方法 | 第102-103页 |
| ·猪脑垂体受体膜制备 | 第102页 |
| ·Sepharose-4B的活化 | 第102-103页 |
| ·抑制素与Sepharose-4B的偶联 | 第103页 |
| ·抑制素受体提取 | 第103页 |
| ·相对分子质量鉴定 | 第103页 |
| ·蛋白质浓度 | 第103页 |
| 2 结果 | 第103-104页 |
| ·定量分析 | 第103页 |
| ·定性分析 | 第103-104页 |
| 3 讨论 | 第104-105页 |
| 4 参考文献 | 第105-107页 |
| 全文讨论 | 第107-109页 |
| 全文结论 | 第109-110页 |
| 创新 | 第110-111页 |
| 附录 | 第111-114页 |
| 博士在读期间发表论文与从事科研及获奖 | 第114-116页 |
| 致谢 | 第116页 |
