| 中文摘要 | 第1-6页 |
| 英文摘要 | 第6-8页 |
| 第一部分 文献综述 | 第8-18页 |
| 1．1 植物叶片衰老的意义及其调控 | 第8-12页 |
| 1．1．1 叶片衰老的意义及其生物学特征 | 第8-9页 |
| 1．1．2 影响叶片衰老的因素及其自身调控 | 第9-10页 |
| 1．1．3 细胞分裂素对叶片衰老的调控 | 第10-12页 |
| 1．2 小麦工程育种的研究进展 | 第12-13页 |
| 1．3 小麦遗传转化研究进展及存在的问题 | 第13-18页 |
| 1．3．1 小麦基因转导所用的方法 | 第13-15页 |
| 1．3．2 小麦转导所用的受体 | 第15页 |
| 1．3．3 小麦遗传转化的选择／标记基因 | 第15-16页 |
| 1．3．4 小麦遗传转化存在的问题 | 第16-18页 |
| 第二部分 引言 | 第18-20页 |
| 2．1 研究的目的意义 | 第18-19页 |
| 2．2 主要研究内容 | 第19-20页 |
| 2．2．1 小麦再生体系的研究 | 第19页 |
| 2．2．2 受体材料对筛选荆的敏感性测验 | 第19页 |
| 2．2．3 农杆菌介导小麦转化方法的研究 | 第19页 |
| 2．2．4 转化植株的鉴定及表型分析 | 第19-20页 |
| 第三部分 利用农杆菌介导法将ipt基因导入小麦 | 第20-45页 |
| 3．1 材料与方法 | 第20-27页 |
| 3．1．1 植物材料 | 第20-22页 |
| 3．1．2 实验方法 | 第22-27页 |
| 3．1．2．1 培养条件 | 第22-23页 |
| 3．1．2．2 无菌材料的获得 | 第23页 |
| 3．1．2．3 小麦植株的再生 | 第23页 |
| 3．1．2．4 受体材料对筛选剂（Km，G418，Basta）的敏感性测验 | 第23页 |
| 3．1．2．5 转化条件的优化 | 第23-24页 |
| 3．1．2．6 农杆菌介导的小麦遗传转化 | 第24-25页 |
| 3．1．2．7 转化体的PCR检测 | 第25-27页 |
| 3．1．2．8 转基因小麦的表型性状分析 | 第27页 |
| 3．2 结果与分析 | 第27-40页 |
| 3．2．1 小麦幼胚愈伤组织的诱导及分化研究体系的研究 | 第27-32页 |
| 3．2．1．1 接种幼胚时盾片放置方式对愈伤组织诱导的影响 | 第27-28页 |
| 3．2．1．2 ABA对愈伤组织诱导的影响 | 第28-29页 |
| 3．2．1．3 不同分化培养基对愈伤组织分化的影响 | 第29-30页 |
| 3．2．1．4 继代次数对分化频率的影响 | 第30-32页 |
| 3．2．2 受体材料对筛选剂的敏感性测验 | 第32-34页 |
| 3．2．3 农杆菌介导小麦遗传转化 | 第34-36页 |
| 3．2．3．1 浸染是时间对转化的影响 | 第34页 |
| 3．2．3．2 AS对转化的影响 | 第34-35页 |
| 3．2．3．3 表面活性剂对转化的影响 | 第35-36页 |
| 3．2．3．4 辅助处理对转化的影响 | 第36页 |
| 3．2．4 转化体的筛选及抗性苗的获得 | 第36-37页 |
| 3．2．5 转化体的不筛选及其与农杆菌共培养植株的获得 | 第37-38页 |
| 3．2．6 抗性植株的PCR鉴定 | 第38-39页 |
| 3．2．7 转化植株的表型性状分析 | 第39-40页 |
| 3．3 讨论 | 第40-43页 |
| 3．3．1 无标记筛选在小麦遗传转化中的探索 | 第41页 |
| 3．3．2 ipt基因的表达对转化植株的影响 | 第41-43页 |
| 3．4 小结 | 第43-45页 |
| 参考文献 | 第45-49页 |
| 附录1 小麦遗传转化研究进展一览表 | 第49-51页 |
| 附录2 缩略词表 | 第51-52页 |
| 致谢 | 第52页 |
