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外源几丁质酶基因转化水稻的研究

中文摘要第1-11页
英文摘要第11-14页
本论文缩写词表第14-16页
第一章 导言第16-32页
 1.1 作物转几丁质酶基因研究进展第16-24页
  1.1.1 几丁质酶的作用原理第16-17页
  1.1.2 几丁质酶的主要性质第17-18页
   1.1.2.1 几丁质酶基因的来源第17页
   1.1.2.2 植物几丁质酶的特性第17页
   1.1.2.3 微生物几丁质酶的主要特性第17-18页
  1.1.3 几丁质酶基因的表达调控第18-20页
   1.1.3.1 植物几丁质酶基因的表达调控第18-19页
    1.1.3.1.1 植物几丁质酶基因表达诱导因子第18页
    1.1.3.1.2 植物几丁质酶基因可诱导性第18-19页
    1.1.3.1.3 植物几丁质酶基因表达特点第19页
   1.1.3.2 微生物几丁质酶基因表达调控特点第19-20页
  1.1.4 几丁质酶基因在植物转化中的应用及存在的问题第20-24页
 1.2 花粉管通道法转化水稻研究进展第24-32页
  1.2.1 花粉管通道法转化水稻的主要原理第24-25页
   1.2.1.1 外源DNA进入水稻细胞的机理第24-25页
   1.2.1.2 外源DNA片段整合到卵细胞核DNA的理论基础第25页
   1.2.1.3 外源DNA经花粉管导入水稻的分子验证第25页
  1.2.2 花粉管通道法转化水稻的成果第25-27页
  1.2.3 外源DNA经花粉管通道导入水稻后引起的性状变异第27-29页
   1.2.3.1 植株形态结构第27页
   1.2.3.2 生育特性第27-28页
   1.2.3.3 抗性第28页
   1.2.3.4 稻米品质第28页
   1.2.3.5 生理生化特性第28页
   1.2.3.6 色素第28-29页
   1.2.3.7 粒形第29页
   1.2.3.8 其他特性第29页
  1.2.4 花粉管通道法转化水稻的操作方式第29页
  1.2.5 影响花粉管通道法转化水稻的因素第29页
  1.2.6 花粉管通道法转化水稻的优点及存在的问题第29-32页
   1.2.6.1 花粉管通道法转化水稻有很多优点第30页
   1.2.6.2 存在的问题和疑义第30-32页
第二章 含几丁质酶基因的植物转化质粒的构建和检验第32-45页
 2.1 引言第32页
 2.2 材料与方法第32-36页
  2.2.1 实验材料第32-33页
   2.2.1.1 菌种和质粒第32页
   2.2.1.2 工具酶及生化试剂第32-33页
  2.2.2 实验方法第33-36页
   2.2.2.1 质粒DNA的小量制备第33页
   2.2.2.2 限制酶切、DNA回收和纯化第33-34页
   2.2.2.3 外源DNA和质粒载体的连接反应第34页
   2.2.2.4 细菌转化第34-35页
   2.2.2.5 重组质粒限制酶切检验第35页
   2.2.2.6 重组质粒PCR检验第35-36页
   2.2.2.7 质粒DNA测序检验第36页
   2.2.2.8 重组质粒几丁质酶活性检验第36页
 2.3 结果与分析第36-45页
  2.3.1 植物表达质粒pBG1112的构建与检验第36-40页
   2.3.1.1 植物表达质粒pB61112的构建第36-37页
   2.3.1.2 植物表达质粒pBG1112的构建流程第37页
   2.3.1.3 植物表达质粒pBG1112的限制酶切检验第37-38页
   2.3.1.4 植物表达质粒pBG1112的PCR检验第38-39页
   2.3.1.5 植物表达质粒pBG1112测序检验第39-40页
  2.3.2 植物表达质粒pBG1121的构建与检验第40-42页
   2.3.2.1 植物表达质粒pBG1121的构建第40-41页
   2.3.2.2 植物表达质粒pB61121的限制酶切检验第41页
   2.3.2.3 植物表达质粒pBG1121的PCR检验第41-42页
   2.3.2.4 植物表达质粒pBG1121的测序检验第42页
   2.3.2.5 植物表达质粒pBG1121的构建流程第42页
  2.3.3 几丁质酶活性的检验第42-45页
第三章 花器介导法转化水稻的研究第45-70页
 3.1 引言第45页
 3.2 材料与方法第45-52页
  3.2.1 实验材料第45-46页
   3.2.1.1 供试水稻品种与品系第45-46页
   3.2.1.2 质粒与基因第46页
   3.2.1.3 菌种第46页
   3.2.1.4 工具酶及生化试剂第46页
  3.2.2 实验方法第46-52页
   3.2.2.1 质粒DNA的大量制备和定量第46-47页
    3.2.2.1.1 质粒DNA的大量制备第46-47页
    3.2.2.1.2 质粒DNA的定量第47页
   3.2.2.2 花器介导法转化水稻第47页
   3.2.2.3 后代材料处理第47-48页
    3.2.2.3.1 潮霉素处理第47页
    3.2.2.3.2 纹枯病菌筛选第47-48页
    3.2.2.3.3 转基因植株后代种子的采收第48页
   3.2.2.4 转基因植株的PCR检验第48-50页
    3.2.2.4.1 水稻总DNA的微量提取和定量第48-49页
    3.2.2.4.2 转基因植株的PCR检验第49-50页
   3.2.2.5 转基因水稻后代的RT-PCR检验第50-51页
    3.2.2.5.1 转基因水稻后代总RNA提取和定量第50-51页
    3.2.2.5.2 转基因水稻后代的RT-PCR第51页
   3.2.2.6 RT-PCR产物的序列分析第51页
   3.2.2.7 转基因水稻后代GUS活性的测定第51-52页
    3.2.2.7.1 试剂配制第51页
    3.2.2.7.2 样品提取第51-52页
   3.2.2.8 转基因水稻后代抗病性鉴定第52页
    3.2.2.8.1 纹枯病抗性鉴定第52页
    3.2.2.8.2 稻瘟病抗性鉴定第52页
 3.3 结果与分析第52-70页
  3.3.1 潮霉素筛选水稻条件的确定第52-55页
   3.3.1.1 不同浓度潮霉素对优丰162的抑制作用第53页
   3.3.1.2 潮霉素筛选最适温度的确定第53-54页
   3.3.1.3 潮霉素对同一水稻品种的未去壳种子和糙米的影响第54-55页
  3.3.2 花器介导法转化水稻的研究第55-59页
   3.3.2.1 适宜于花器介导法转化的水稻品种的筛选第55-57页
   3.3.2.2 光照对转化的影响第57页
   3.3.2.3 气温对水稻转化的影响第57-58页
   3.3.2.4 质粒浓度对转化的影响第58-59页
  3.3.3 转基因后代的PCR检验第59-61页
  3.3.4 转基因水稻T_3代的RT-PCR检验第61页
  3.3.5 转基因水稻T_3代RT-PCR核苷酸序列分析第61-62页
  3.3.6 转基因水稻T_4代GUS活性的检测第62-64页
  3.3.7 转基因水稻后代抗病性测定第64-70页
   3.3.7.1 纹枯病抗性鉴定第64-68页
   3.3.7.2 稻瘟病抗性鉴定第68-70页
第四章 结论与讨论第70-75页
 4.1 植物表达质粒pBG1112和pBG1121的构建和应用前景第70页
 4.2 花器介导法的可行性和实用性第70-71页
 4.3 影响花器介导转化水稻的因素第71-72页
 4.4 转基因水稻的安全性和应用前景第72-73页
 4.5 外源几丁质酶基因在转基因水稻抗病中的作用第73-74页
 4.6 本研究的创新点第74页
 4.7 有待进一步研究的问题第74-75页
参考文献第75-86页
附录第86-119页
 附录A P35S/SchiA/Tnos的测序报告第86-93页
 附录B 重组质粒pBG1112中细菌几丁质酶基因35S启动子的BLAST检索结果第93-99页
 附录C P35S/TchiB/Tnos的测序报告第99-105页
 附录D 重组质粒pBG1121中烟草几丁质酶基因35S启动子的BLAST检索结果第105-110页
 附录E RT-PCR产物序列第110-112页
 附录F RT-PCR产物序列BLAST检索结果第112-119页
致谢第119-120页
作者简历第120页

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