中文摘要 | 第1-9页 |
英文摘要 | 第9-13页 |
英文缩写释义 | 第13-14页 |
前言 | 第14-18页 |
主要实验材料 | 第18-23页 |
一、实验动物及细胞株 | 第18页 |
二、单克隆抗体 | 第18页 |
三、人工合成的寡聚脱氧核苷酸片段 | 第18-19页 |
四、质粒探针 | 第19页 |
五、宿主菌 | 第19页 |
六、主要试剂 | 第19-20页 |
七、主要仪器 | 第20页 |
八、主要溶液的配制 | 第20-23页 |
主要实验方法 | 第23-29页 |
一、细胞培养 | 第23页 |
二、细胞增殖动力学的测定-MTT法 | 第23-24页 |
三、~3H-TdR掺入试验 | 第24页 |
四、药物诱导后细胞的细胞周期测定 | 第24页 |
五、双层软琼脂集落形成测定 | 第24-25页 |
六、裸鼠移植瘤的观察 | 第25页 |
七、透射电镜标本的制备和观察 | 第25-26页 |
八、癌基因蛋白产物及肿瘤标志物的分析(流式细胞仪测定) | 第26页 |
九、细胞总RNA的提取及鉴定 | 第26页 |
十、细胞的分子杂交 | 第26-28页 |
1.探针的制备 | 第26-28页 |
2.分子杂交 | 第28页 |
十一、统计学处理 | 第28-29页 |
实验结果 | 第29-46页 |
一、8-Br-cAMP对胃癌细胞增殖动力学的影响 | 第29-31页 |
1.MTT法结果 | 第29-31页 |
2.~3H-TdR掺入结果 | 第31页 |
二、8-Br-cAMP对细胞周期的影响 | 第31-34页 |
三、胃癌细胞株集落形成的变化 | 第34页 |
四、对裸鼠皮下移植瘤形成的影响 | 第34页 |
五、细胞透射电镜结果 | 第34-35页 |
六、对癌基因蛋白产物及肿瘤相关抗原表达的调节 | 第35-38页 |
七、与细胞因子联合诱导对胃癌细胞的影响 | 第38-39页 |
八、与化疗药物联合应用对CCEM/VcR耐药株的影响 | 第39-40页 |
九、细胞总RNA提取鉴定结果 | 第40-41页 |
十、质粒提取酶切及电泳回收结果 | 第41-42页 |
十一、分子杂交结果 | 第42-43页 |
十二、R_(Ⅰα)反义ODN对MGC_(803)细胞增殖的影响 | 第43-46页 |
讨论 | 第46-56页 |
一、关于诱导药物敏感性测定 | 第46-47页 |
二、肿瘤集落形成测定在肿瘤研究中的应用价值 | 第47-48页 |
三、关于8-Br-cAMP对胃癌细胞增殖动力学的影响 | 第48-49页 |
四、关于8-Br-cAMP与药物联合应用时的效果及其意义 | 第49-51页 |
五、关于8-Br-cAMP的诱导分化作用 | 第51-52页 |
六、关于8-Br-cAMP抗肿瘤作用机制 | 第52-54页 |
七、R_(Ⅰα)反义ODN应用的意义及前景 | 第54-56页 |
小结 | 第56-58页 |
致谢 | 第58-59页 |
附图 | 第59-64页 |
文献综述 | 第64-82页 |
一、cAMP受体蛋白对细胞生长和分化的调节及其在肿瘤治疗中的意义 | 第64-70页 |
二、肿瘤的诱导分化与诱导分化治疗的现状 | 第70-77页 |
三、反义核酸技术在肿瘤治疗中的应用 | 第77-82页 |
参考文献 | 第82-99页 |