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联合运用PEG3启动子和sTRAIL基因对人恶性畸胎瘤抑制作用的初步研究

中文摘要第1-6页
英文摘要第6-13页
专业名词缩写中英文对照表第13-14页
技术路线图第14-15页
前言第15-19页
第一章 材料与方法第19-43页
 一 材料第19-22页
  1 主要材料第19页
  2 主要试剂第19-20页
  3 主要仪器第20-21页
  4 质粒和细菌第21-22页
 二 方法第22-43页
  1 感受态菌种的制备第22-23页
  2 细胞和组织总RNA的获得第23-24页
  3 大鼠基因组DNA获得第24页
  4 人全血gDNA的抽提第24-25页
  5 RNA逆转录得到cDNA第25页
  6 NTERA-2细胞培养第25页
  7 hTERT及PEG3启动子和sTRAIL基因扩增第25-27页
  8 胶回收扩增产物—基因第27页
  9 基因与T载体连接第27-28页
  10 T-sTRAIL T-PEG3及T-hTERT质粒抽提第28页
  11 T-sTRAIL T-PEG3及T-hTERT基因阳性克隆PCR和酶切签定第28-30页
  12 pAAV-PEG3/hTERT-sTRAIL治疗载体及PGL3-PEG3载体的构建第30-31页
  13 质粒的中量制备第31-32页
  14 pAAV-PEG3/hTERT-sTRAIL表达载体及PGL3-PEG3/hTER在细胞中的表达第32-33页
  15 报道基因荧光素酶活性分析第33页
  16 NTERA-2细胞胚胎全能性基因及畸胎瘤三胚层分化基因PCR扩增第33-34页
  17 流式细胞仪检测CD133、SSEA-4、ABCG2、TRA-1-60第34页
  18 早期凋亡检测第34-35页
  19 中期凋亡检测第35页
  20 半定量、定量RT-PCR检测第35-37页
  21 Western blot的步骤第37-38页
  22 体外成瘤实验第38页
  23 动物模型构建及治疗第38-39页
  24 肿瘤体积测量,荷瘤SCID小鼠称重第39页
  25 细胞毒实验第39页
  26 免疫组化第39-40页
  27 TUNUL检测第40-41页
  28 HE染色第41页
  29 拟胚体形成第41-42页
  30 统计分析第42-43页
第二章 实验结果第43-90页
 1 PEG3和hTERT启动子扩增第43-46页
 2 sTRAIL基因扩增第46-48页
 3 AAV-PEG-sTRAIL及AAV-hTERT-sTRAIL治疗载体的构建第48页
 4 PGL3-PEG3萤光素报告基因载体的构建第48-51页
 5 PEG3启动子在不同细胞系中转基因表达能力分析第51页
 6 NTERA-2细胞全能基因表达分析第51-53页
 7 NTERA-2细胞CD133、ABCG2、SSEA-4、TRA-1-60表达研究第53-54页
 8 NTERA-2细胞拟胚体形成研究第54-55页
 9 NTERA-2细胞和ES细胞早期凋亡检测第55-57页
 10 NTERA-2细胞中期凋亡检测第57-58页
 11 半定量RT-PCR检测sTRAIL基因表达第58-59页
 12 定量PCR检测sTRAIL基因的受体表达第59-63页
 13 Caspase-3 Western blot检测第63-64页
 14 体外成瘤实验结果第64-69页
 15 NTERA-2细胞体内三胚层分化及全能性检测第69-73页
 16 荷瘤SCID小鼠治疗结果第73-84页
 17 细胞毒实验结果第84-90页
第三章 讨论第90-95页
 一 肿瘤特异性启动子的选择第90-91页
 二 可溶性TRAIL(sTRAIL)基因的细胞毒作用第91-92页
 三 基因治疗过程中治疗载体的选择第92-95页
小结第95-96页
参考文献第96-103页
综述:肿瘤干/祖细胞研究进展第103-141页
致谢第141-142页
攻读学位期间的主要研究成果第142页

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