| 致谢 | 第1-6页 |
| 摘要 | 第6-7页 |
| Abstract | 第7-8页 |
| 目录 | 第8-11页 |
| 第一章 绪论 | 第11-27页 |
| ·研究背景及意义 | 第11-14页 |
| ·薄荷醇简介及研究意义 | 第11-12页 |
| ·生物催化与手性合成 | 第12-14页 |
| ·L-薄荷醇制备的方法及进展 | 第14-19页 |
| ·不对称合成法 | 第14-17页 |
| ·消旋薄荷醇的合成与拆分 | 第17-18页 |
| ·L-薄荷醇合成方法比较 | 第18-19页 |
| ·非水相生物催化 | 第19-22页 |
| ·几种典型的非水相系统 | 第19-21页 |
| ·脂肪酶催化的酯交换反应 | 第21-22页 |
| ·酶的固定化技术 | 第22-24页 |
| ·固定化酶的功能与任务 | 第22-23页 |
| ·基于吸附的固定化方法 | 第23-24页 |
| ·微生物与生物转化 | 第24-25页 |
| ·微生物催化反应特点 | 第24页 |
| ·微生物催化方法 | 第24-25页 |
| ·本课题研究目标与思路 | 第25-27页 |
| ·研究目标和内容 | 第25页 |
| ·研究思路 | 第25-27页 |
| 第二章 有机相游离脂肪酶催化不对称转酯化拆分制备L-薄荷醇 | 第27-44页 |
| ·引言 | 第27-28页 |
| ·材料与方法 | 第28-34页 |
| ·实验材料及试剂 | 第28-29页 |
| ·主要实验仪器 | 第29页 |
| ·分析方法 | 第29-33页 |
| ·实验体系 | 第33-34页 |
| ·结果与讨论 | 第34-43页 |
| ·脂肪酶的筛选 | 第34-35页 |
| ·溶剂的筛选 | 第35-36页 |
| ·酰基供体的选择 | 第36-38页 |
| ·NaHCO_3添加量对拆分反应的影响 | 第38-39页 |
| ·ZJU025酶与ASL非对映体选择性对比 | 第39-40页 |
| ·温度对转酯化反应的影响 | 第40-41页 |
| ·底物比例对转酯化反应的影响 | 第41-42页 |
| ·消旋薄荷醇异构体组成改变对转酯化拆分的影响 | 第42-43页 |
| ·本章小结 | 第43-44页 |
| 第三章 有机相固定化脂肪酶催化不对称转酯化拆分制备L-薄荷醇 | 第44-56页 |
| ·引言 | 第44-45页 |
| ·材料与方法 | 第45-49页 |
| ·实验材料及试剂 | 第45页 |
| ·主要实验仪器 | 第45-46页 |
| ·分析方法 | 第46-47页 |
| ·硅藻土吸附固定化酶的制备 | 第47页 |
| ·树脂吸附和交联固定化酶的制备 | 第47-48页 |
| ·酶的稳定性考察 | 第48页 |
| ·固定化酶的酶活测定 | 第48-49页 |
| ·固定化酶拆分消旋薄荷醇转酯化体系 | 第49页 |
| ·考虑固定化酶在催化转酯化过程中对底物和产物是否有吸附 | 第49页 |
| ·结果与讨论 | 第49-55页 |
| ·硅藻土固定化酶催化活力比较 | 第49-50页 |
| ·树脂吸附固定化酶催化消旋薄荷醇转酯化拆分效果 | 第50-55页 |
| ·本章小结 | 第55-56页 |
| 第四章 微生物催化不对称水解拆分制备L-薄荷醇 | 第56-66页 |
| ·引言 | 第56-57页 |
| ·材料与方法 | 第57-60页 |
| ·实验材料及试剂 | 第57页 |
| ·主要实验仪器 | 第57-58页 |
| ·分析方法 | 第58-59页 |
| ·实验体系 | 第59-60页 |
| ·菌种鉴定 | 第60页 |
| ·结果与讨论 | 第60-65页 |
| ·胞外酶的确定 | 第60-61页 |
| ·不同消旋底物的水解拆分效果对比 | 第61-62页 |
| ·温度和pH的影响 | 第62-64页 |
| ·底物浓度的影响 | 第64-65页 |
| ·本章小结 | 第65-66页 |
| 第五章 结论与展望 | 第66-68页 |
| 参考文献 | 第68-74页 |
| 研究成果发表情况 | 第74页 |
