摘要 | 第4-5页 |
ABSTRACT | 第5页 |
1 前言 | 第8-20页 |
1.1 生物表面活性剂 | 第8-10页 |
1.1.1 鼠李糖脂 | 第8-9页 |
1.1.2 鼠李糖脂应用 | 第9-10页 |
1.2 鼠李糖脂微生物合成 | 第10-12页 |
1.2.1 产鼠李糖脂的菌株 | 第10-11页 |
1.2.2 鼠李糖脂代谢途径 | 第11-12页 |
1.2.3 鼠李糖脂种类 | 第12页 |
1.3 鼠李糖脂的生产 | 第12-15页 |
1.3.1 菌种的选育 | 第13页 |
1.3.2 培养基成分 | 第13-14页 |
1.3.3 发酵条件 | 第14-15页 |
1.3.4 鼠李糖脂分析方法 | 第15页 |
1.4 生物表面活性剂在采油工业中的应用 | 第15-17页 |
1.4.1 鼠李糖脂清洗油罐 | 第16页 |
1.4.2 微生物法提高石油采收率 | 第16-17页 |
1.5 微生物法治理石油烃污染 | 第17-18页 |
1.5.1 微生物摄取烃类的方式 | 第17页 |
1.5.2 鼠李糖脂促进难溶有机物的分散和吸收 | 第17-18页 |
1.5.3 微生物在环境修复中的优势 | 第18页 |
1.6 论文研究意义和研究内容 | 第18-20页 |
1.6.1 论文研究意义 | 第18页 |
1.6.2 论文研究内容 | 第18-20页 |
2 材料与方法 | 第20-33页 |
2.1 实验材料 | 第20-24页 |
2.1.1 菌株 | 第20页 |
2.1.2 培养基 | 第20-21页 |
2.1.3 主要试剂 | 第21-22页 |
2.1.4 主要仪器 | 第22-23页 |
2.1.5 主要溶液 | 第23-24页 |
2.2 实验方法 | 第24-33页 |
2.2.1 CTAB平板法筛选鼠李糖脂生产菌株 | 第24-25页 |
2.2.2 蒽酮硫酸法定量分析鼠李糖脂产量 | 第25-26页 |
2.2.3 分离细菌的鉴定 | 第26-28页 |
2.2.4 鼠李糖脂摇瓶水平发酵分析 | 第28页 |
2.2.5 发酵液乳化能力的测定 | 第28-29页 |
2.2.6 鼠李糖脂产物的分析方法 | 第29-30页 |
2.2.7 分离菌株利用碳氢化合物能力的分析 | 第30-31页 |
2.2.8 筛选菌株降解原油能力的分析 | 第31-33页 |
3 结果与讨论 | 第33-54页 |
3.1 高产鼠李糖脂菌株的筛选 | 第33-38页 |
3.1.1 CTAB平板法分离鼠李糖脂生产菌株 | 第33页 |
3.1.2 定量分析分离菌株的鼠李糖脂产量 | 第33-38页 |
3.2 高产鼠李糖脂菌株的鉴定 | 第38-41页 |
3.2.1 16S rRNA分子生物学鉴定 | 第38-40页 |
3.2.2 分离菌株生理生化性质分析 | 第40-41页 |
3.3 鼠李糖脂摇瓶水平发酵分析 | 第41-44页 |
3.3.1 不同碳源发酵分析 | 第41-42页 |
3.3.2 不同菜籽油浓度发酵对比 | 第42-43页 |
3.3.3 不同NaNO_3浓度发酵对比 | 第43页 |
3.3.4 不同温度发酵对比 | 第43-44页 |
3.4 高产菌株产鼠李糖脂时间曲线分析 | 第44-45页 |
3.4.1 菌株P. aeruginosa A487产鼠李糖脂脂时间曲线 | 第44页 |
3.4.2 菌株P. aeruginosa B12产鼠李糖脂时间曲线 | 第44-45页 |
3.5 鼠李糖脂纯化及性质测定 | 第45-49页 |
3.5.1 鼠李糖脂纯化 | 第45页 |
3.5.2 CMC的测定 | 第45-46页 |
3.5.3 鼠李糖脂TLC薄层层析分析 | 第46-47页 |
3.5.4 鼠李糖脂红外光谱扫描 | 第47-49页 |
3.6 菌株对碳氢化合物利用分析 | 第49-50页 |
3.6.1 菌株D1对碳氢化合物的利用 | 第49-50页 |
3.6.2 菌株E1对碳氢化合物的利用 | 第50页 |
3.7 菌株降解原油的应用研究 | 第50-54页 |
3.7.1 原油降解时间曲线 | 第50-51页 |
3.7.2 补充限量甘油对原油降解的影响 | 第51-54页 |
4 结论 | 第54-55页 |
5 展望 | 第55-56页 |
6 参考文献 | 第56-63页 |
7 攻读硕士学位期间发表论文情况 | 第63-64页 |
8 致谢 | 第64页 |