| 摘要 | 第12-15页 |
| Abstract | 第15-18页 |
| 缩略词表 | 第19-21页 |
| 第一章 绪论 | 第21-54页 |
| 一、抑郁症的研究现状 | 第21-27页 |
| （一）抑郁症简介 | 第21页 |
| （二）抑郁症的流行病学 | 第21页 |
| （三）抑郁症的分类 | 第21-22页 |
| （四）抑郁症的病因假说 | 第22-24页 |
| （五）抑郁症的临床治疗 | 第24-26页 |
| （六）抑郁症的动物模型 | 第26-27页 |
| 二、代谢组学的研究背景 | 第27-32页 |
| （一）代谢组学的概念 | 第27-28页 |
| （二）代谢组学的研究策略 | 第28-31页 |
| （三）代谢组学在抑郁症研究中应用 | 第31-32页 |
| 三、肠道菌群的研究背景 | 第32-39页 |
| （一）肠道菌群简介 | 第32-33页 |
| （二）肠道菌群的主要功能 | 第33-35页 |
| （三）影响肠道菌群平衡的因素 | 第35-36页 |
| （四）肠道菌群的检测方法 | 第36-37页 |
| （五）肠道菌群与抑郁症的关系 | 第37-39页 |
| 四、中药治疗抑郁症的研究现状 | 第39页 |
| 五、课题的立项意义以及研究内容 | 第39-43页 |
| （一）本课题的立项意义 | 第39-41页 |
| （二）本课题的研究内容 | 第41-43页 |
| 参考文献 | 第43-54页 |
| 第二章 抑郁症患者的血清代谢组学研究 | 第54-87页 |
| 一、引言 | 第54-55页 |
| 二、实验材料 | 第55-58页 |
| （一）实验试剂 | 第55页 |
| （二）主要仪器 | 第55-56页 |
| （三）研究对象 | 第56-58页 |
| 三、实验方法 | 第58-61页 |
| （一）血清样本采集 | 第58页 |
| （二）血清的UPLC-Q/TOF-MS分析 | 第58-59页 |
| （三）数据处理和分析 | 第59-61页 |
| 四、实验结果 | 第61-78页 |
| （一）血清样本收集的基本情况 | 第61页 |
| （二）方法的重复性和稳定性考察 | 第61-64页 |
| （三）血清代谢组学分析结果 | 第64-78页 |
| 五、讨论 | 第78-81页 |
| 六、本章小结 | 第81-82页 |
| 参考文献 | 第82-87页 |
| 第三章 抑郁症患者的尿液代谢组学研究 | 第87-114页 |
| 一、引言 | 第87-88页 |
| 二、实验材料 | 第88-89页 |
| （一）实验试剂 | 第88页 |
| （二）主要仪器 | 第88-89页 |
| （三）研究对象 | 第89页 |
| 三、实验方法 | 第89-92页 |
| （一）尿液样本采集 | 第89页 |
| （二）尿液的UPLC-Q/TOF-MS分析 | 第89-91页 |
| （三）数据处理和分析 | 第91-92页 |
| 四、实验结果 | 第92-107页 |
| （一）尿液样本收集的基本情况 | 第92页 |
| （二）方法的重复性和稳定性考察 | 第92-93页 |
| （三）尿液代谢组学分析结果 | 第93-107页 |
| 五、讨论 | 第107-110页 |
| 六、本章小结 | 第110-111页 |
| 参考文献 | 第111-114页 |
| 第四章 抑郁症患者的肠道菌群结构特征分析 | 第114-162页 |
| 一、引言 | 第114-115页 |
| 二、实验材料 | 第115-116页 |
| （一）实验试剂 | 第115页 |
| （二）主要仪器 | 第115-116页 |
| （三）研究对象 | 第116页 |
| 三、实验方法 | 第116-122页 |
| （一）粪便样本采集 | 第116-117页 |
| （二）粪便样本总DNA的提取 | 第117-119页 |
| （三）引物设计及PCR扩增 | 第119-120页 |
| （四）Mi Seq文库构建 | 第120页 |
| （五）Illumina Mi Seq测序 | 第120-121页 |
| （六）生物信息学分析 | 第121-122页 |
| （七）统计学分析 | 第122页 |
| 四、实验结果 | 第122-143页 |
| （一）序列多样性分析 | 第122-128页 |
| （二）物种组成分析 | 第128-135页 |
| （三）Alpha多样性分析 | 第135-139页 |
| （四）Beta多样性分析 | 第139-140页 |
| （五）物种差异分析 | 第140-143页 |
| 五、讨论 | 第143-146页 |
| 六、本章小结 | 第146-147页 |
| 参考文献 | 第147-151页 |
| 附表 | 第151-162页 |
| 第五章 抑郁症患者血清/尿液代谢组与肠道菌群的相关性分析 | 第162-171页 |
| 一、引言 | 第162页 |
| 二、数据处理方法 | 第162-163页 |
| 三、结果与讨论 | 第163-168页 |
| 四、本章小结 | 第168-169页 |
| 参考文献 | 第169-171页 |
| 第六章 Bacopaside Ⅰ对CUMS诱导的抑郁症小鼠的分子机制研究 | 第171-201页 |
| 一、引言 | 第171-173页 |
| （一）假马齿苋的研究现状 | 第171-172页 |
| （二）Bacopaside Ⅰ的神经保护作用研究 | 第172-173页 |
| 二、实验材料 | 第173-176页 |
| （一）实验药物与试剂 | 第173-175页 |
| （二）主要仪器设备 | 第175-176页 |
| （三）实验基本用具 | 第176页 |
| （四）实验动物 | 第176页 |
| 三、实验方法 | 第176-186页 |
| （一）药物溶液配制 | 第176页 |
| （二）CUMS模型的建立方法 | 第176-177页 |
| （三）实验分组及给药方案 | 第177-178页 |
| （四）行为学评价方法 | 第178-179页 |
| （五）样本采集及保存 | 第179-180页 |
| （六）ELISA法测定血浆中皮质酮的含量 | 第180页 |
| （七）RT-q PCR法检测海马和前额组织中GR和BDNF m RNA的表达水平 | 第180-184页 |
| （八）Western Blot法检测海马和前额组织中相关蛋白的表达水平 | 第184-186页 |
| （九）统计学分析 | 第186页 |
| 四、实验结果 | 第186-193页 |
| （一）Bacopaside Ⅰ改善CUMS诱导的小鼠抑郁行为 | 第186-189页 |
| （二）Bacopaside Ⅰ对CUMS小鼠血浆中皮质酮的影响 | 第189-190页 |
| （三）Bacopaside Ⅰ对CUMS小鼠海马和前额组织中GR和BDNFm RNA表达的影响 | 第190-191页 |
| （四）Bacopaside Ⅰ对CUMS小鼠海马和前额组织中相关蛋白表达的影响 | 第191-193页 |
| 五、讨论 | 第193-195页 |
| 六、本章小结 | 第195-197页 |
| 参考文献 | 第197-201页 |
| 第七章 Bacopaside Ⅰ对CUMS诱导的抑郁症小鼠的代谢组学研究 | 第201-227页 |
| 一、引言 | 第201-202页 |
| 二、实验材料 | 第202-204页 |
| （一）实验药物与试剂 | 第202页 |
| （二）主要仪器设备 | 第202-203页 |
| （三）实验基本用具 | 第203页 |
| （四）实验动物 | 第203-204页 |
| 三、实验方法 | 第204-206页 |
| （一）药物溶液配制 | 第204页 |
| （二）CUMS模型的建立方法 | 第204页 |
| （三）实验分组及给药方案 | 第204页 |
| （四）血浆样本预处理 | 第204-205页 |
| （五）血浆的UPLC-Q/TOF-MS分析 | 第205页 |
| （六）数据提取 | 第205-206页 |
| （七）多元统计分析 | 第206页 |
| （八）血浆差异代谢物的鉴定 | 第206页 |
| （九）血浆代谢通路分析 | 第206页 |
| 四、实验结果 | 第206-218页 |
| （一）方法的重复性和稳定性考察 | 第206-207页 |
| （二）代谢组学研究结果 | 第207-218页 |
| 五、讨论 | 第218-221页 |
| 六、本章小结 | 第221-223页 |
| 参考文献 | 第223-227页 |
| 第六章 研究总结与展望 | 第227-230页 |
| 一、研究总结 | 第227-229页 |
| 二、展望 | 第229-230页 |
| 附录Ⅰ 汉密尔顿抑郁量表 | 第230-232页 |
| 附录Ⅱ 常用溶液的配制 | 第232-235页 |
| 附录Ⅲ Bacopaside Ⅰ的质谱和核磁谱图 | 第235-240页 |
| 攻读博士学位期间的主要研究成果 | 第240-243页 |
| 致谢 | 第243-244页 |
