摘要 | 第6-9页 |
ABSTRACT | 第9-11页 |
缩写符号对照表 | 第12-13页 |
第1章 文献综述 | 第13-21页 |
1.1 G蛋白偶联苦味受体(TAS2Rs)的研究进展 | 第13-15页 |
1.1.1 TAS2Rs的结构和功能 | 第13页 |
1.1.2 TAS2Rs介导的信号转导通路 | 第13-14页 |
1.1.3 TAS2Rs激动剂概述 | 第14-15页 |
1.2 血管收缩与舒张的机制 | 第15-19页 |
1.2.1 血管的基本结构 | 第15-16页 |
1.2.2 血管平滑肌细胞的基本结构 | 第16页 |
1.2.3 血管平滑肌细胞的收缩与舒张机制 | 第16-19页 |
1.3 TAS2Rs调节血管功能的研究进展 | 第19-21页 |
1.3.1 TAS2Rs在血管系统表达水平的研究 | 第19页 |
1.3.2 TAS2Rs调节血管功能的机制研究 | 第19-21页 |
第2章 引言 | 第21-23页 |
第3章 大鼠主动脉血管和VSMC中TAS2RsmRNA表达水平的检测 | 第23-33页 |
3.1 实验仪器和材料 | 第23-24页 |
3.1.1 实验动物 | 第23页 |
3.1.2 主要仪器 | 第23页 |
3.1.3 主要试剂 | 第23-24页 |
3.2 实验内容 | 第24-29页 |
3.2.1 实验前准备 | 第24页 |
3.2.2 大鼠主动脉血管的分离 | 第24页 |
3.2.3 大鼠主动脉VSMC的分离 | 第24-25页 |
3.2.4 大鼠主动脉血管和VSMC中RNA的提取 | 第25-26页 |
3.2.5 RNA纯度及浓度的检测 | 第26页 |
3.2.6 RNA完整性的检测 | 第26页 |
3.2.7 去除基因组DNA及反转录 | 第26-27页 |
3.2.8 qPCR实验 | 第27-29页 |
3.3 数据处理及统计方法 | 第29页 |
3.4 实验结果 | 第29-30页 |
3.5 讨论 | 第30-33页 |
第4章 TAS2Rs调节大鼠主动脉的功能及机制 | 第33-61页 |
4.1 实验仪器和材料 | 第33-34页 |
4.1.1 实验动物 | 第33页 |
4.1.2 实验仪器 | 第33页 |
4.1.3 实验试剂 | 第33页 |
4.1.4 实验溶液 | 第33-34页 |
4.2 实验内容 | 第34-35页 |
4.2.1 离体主动脉血管环的分离 | 第34页 |
4.2.2 离体主动脉血管环的固定 | 第34页 |
4.2.3 TAS2Rs激动剂对三种条件下预收缩主动脉血管环的作用 | 第34-35页 |
4.2.4 TAS2Rs激动剂对苯肾上腺素预收缩去除内皮的主动脉血管环的作用 | 第35页 |
4.2.5 TAS2Rs介导主动脉血管舒张反应的机制研究 | 第35页 |
4.3 数据分析 | 第35页 |
4.4 实验结果 | 第35-58页 |
4.4.1 TAS2Rs激动剂对60mMKCl预收缩主动脉血管环的作用 | 第35-37页 |
4.4.2 TAS2Rs激动剂对10μM苯肾上腺素预收缩主动脉血管环的作用 | 第37-42页 |
4.4.3 TAS2Rs激动剂对电刺激(10V,25Hz)预收缩主动脉血管环的作用 | 第42-45页 |
4.4.4 小结 | 第45页 |
4.4.5 TAS2Rs激动剂对苯肾上腺素预收缩去除内皮的主动脉血管环的作用 | 第45-48页 |
4.4.6 PLC抑制剂U-73221对TAS2Rs激动剂舒张血管作用的影响 | 第48页 |
4.4.7 非选择性钾离子通道抑制剂TEA对TAS2Rs激动剂舒张血管作用的影响 | 第48-51页 |
4.4.8 L型钙离子通道抑制剂nifedipine对TAS2Rs激动剂舒张血管作用的影响 | 第51-56页 |
4.4.9 SERCA抑制剂thapsigargin对TAS2Rs激动剂舒张血管作用的影响 | 第56-57页 |
4.4.10 机制研究小结 | 第57-58页 |
4.5 讨论 | 第58-61页 |
结论 | 第61-63页 |
参考文献 | 第63-69页 |
硕士期间科研成果 | 第69-71页 |
致谢 | 第71页 |